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酵母β-葡聚糖和活性多肽的制备及其性质研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
目录第9-13页
第一章 绪论第13-28页
    1.1 酿酒酵母概述第13-14页
        1.1.1 酿酒酵母的组成第13页
        1.1.2 酵母资源的研究利用现状第13-14页
    1.2 生物活性肽的研究现状第14-16页
        1.2.1 生物活性肽概述第14-15页
        1.2.2 生物活性肽的来源与制备第15-16页
    1.3 酵母 β-葡聚糖的研究进展第16-20页
        1.3.1 酵母 β-葡聚糖的结构第16-17页
        1.3.2 酵母 β-葡聚糖的提取第17-19页
        1.3.3 酵母 β-葡聚糖的生理功能第19-20页
    1.4 益生元效应第20-25页
        1.4.1 益生菌简介第20-21页
        1.4.2 益生元概述第21-22页
        1.4.3 益生元的生理功能第22-24页
        1.4.4 益生元的评价方法第24页
        1.4.5 长链的 β-葡聚糖是新型益生元的候选第24-25页
    1.5 本课题研究意义及主要研究内容第25-28页
        1.5.1 研究背景及意义第25页
        1.5.2 工艺路线第25-26页
        1.5.3 主要研究内容第26-28页
第二章 酶解酵母蛋白制备多肽产品及其性质研究第28-39页
    2.1 引言第28页
    2.2 实验材料与仪器第28-30页
        2.2.1 实验材料第28-29页
        2.2.2 实验仪器与设备第29-30页
    2.3 实验方法第30-33页
        2.3.1 多肽产品的制备第30页
        2.3.2 多肽组分分析第30页
        2.3.3 多肽产品的功能特性第30-31页
        2.3.5 多肽产品的抗氧化活性第31-32页
        2.3.6 多肽产品的α-葡萄糖苷酶抑制活性第32-33页
    2.4 结果与讨论第33-38页
        2.4.1 多肽组分分析第33页
        2.4.2 多肽产品的功能特性第33-36页
        2.4.3 多肽产品的抗氧化活性第36-37页
        2.4.4 多肽产品的 α-葡萄糖苷酶抑制活性第37-38页
    2.5 本章小结第38-39页
第三章 超声辅助碱法提取酵母β-葡聚糖的工艺及优化第39-53页
    3.1 引言第39页
    3.2 实验材料与仪器第39-40页
        3.2.1 实验材料第39-40页
        3.2.2 实验仪器与设备第40页
    3.3 实验方法第40-45页
        3.3.1 多糖含量及多糖提取率的测定第40-42页
        3.3.2 超声波辅助碱法提取的工艺优化第42-45页
    3.4 结果与讨论第45-52页
        3.4.1 提取葡聚糖的单因素试验第45-49页
        3.4.2 提取葡聚糖的正交试验第49-50页
        3.4.3 超滤除盐浓缩与干燥第50-51页
        3.4.4 水溶性葡聚糖的溶解性第51-52页
    3.5 本章小结第52-53页
第四章 水溶性酵母β-葡聚糖的理化性质第53-61页
    4.1 引言第53页
    4.2 实验材料与仪器第53-54页
        4.2.1 实验材料第53页
        4.2.2 实验仪器与设备第53-54页
    4.3 实验方法第54-55页
        4.3.1 酵母 β-葡聚糖的成分分析第54页
        4.3.2 薄层色谱法第54页
        4.3.3 红外光谱法第54页
        4.3.4 刚果红实验第54-55页
        4.3.5 分子量的测定第55页
        4.3.6 抗氧化性第55页
    4.4 结果与讨论第55-60页
        4.4.1 β-葡聚糖的成分分析第55页
        4.4.2 薄层色谱法第55-56页
        4.4.3 红外光谱法第56-57页
        4.4.4 刚果红实验第57-58页
        4.4.5 分子量的测定第58-59页
        4.4.6 抗氧化性能第59-60页
    4.5 本章小结第60-61页
第五章 酵母β-葡聚糖体外益生元效应第61-73页
    5.1 引言第61页
    5.2 实验材料与仪器第61-62页
        5.2.1 实验材料第61页
        5.2.2 实验仪器与设备第61-62页
    5.3 实验方法第62-64页
        5.3.1 β-葡聚糖的抗消化性第62-63页
        5.3.2 培养基的配置第63页
        5.3.3 益生菌的活化与增殖培养第63-64页
    5.4 结果与讨论第64-71页
        5.4.1 酵母水溶性 β-葡聚糖对模拟胃液的抗消化性第64-65页
        5.4.2 酵母水溶性 β-葡聚糖对 α-淀粉酶的抗消化性第65-66页
        5.4.3 益生菌在基础培养基中的生长情况第66-67页
        5.4.4 酵母水溶性 β-葡聚糖对益生菌生长的影响第67-68页
        5.4.5 添加不同浓度的水溶性 β-葡聚糖对益生菌生长的影响第68-69页
        5.4.6 酵母水溶性 β-葡聚糖和低聚果糖对益生菌生长的影响第69-71页
    5.5 本章小结第71-73页
结论与展望第73-75页
    一、结论第73-74页
    二、创新点第74页
    三、展望第74-75页
参考文献第75-81页
攻读硕士学位期间取得的研究成果第81-82页
致谢第82-83页
附件第83页

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