| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 自由基与疾病和衰老 | 第11-13页 |
| 1.1.1 自由基的定义 | 第11页 |
| 1.1.2 自由基的危害 | 第11-12页 |
| 1.1.3 自由基与衰老 | 第12-13页 |
| 1.2 天然抗氧化剂与抗氧化机理 | 第13-15页 |
| 1.2.1 天然抗氧化剂概述 | 第13页 |
| 1.2.2 天然抗氧化剂抗氧化机理 | 第13-14页 |
| 1.2.3 天然抗氧化剂与衰老 | 第14-15页 |
| 1.3 微生物抗氧化活性的研究 | 第15-19页 |
| 1.3.1 微生物体外抗氧化活性的研究 | 第15-16页 |
| 1.3.2 微生物体内抗氧化活性的研究 | 第16-17页 |
| 1.3.3 具有抗氧化活性的微生物在发酵食品中的应用 | 第17-18页 |
| 1.3.4 乳酸菌抗氧化活性研究进展 | 第18-19页 |
| 1.4 研究目的意义与研究内容 | 第19-21页 |
| 1.4.1 研究目的意义 | 第19-20页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 1.5 技术路线 | 第21-22页 |
| 第2章 副干酪乳杆菌HD1.7体外抗氧化活性的测定 | 第22-40页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第22-25页 |
| 2.1.1 菌种 | 第22页 |
| 2.1.2 生化试剂及试剂盒 | 第22-23页 |
| 2.1.3 试验用溶液的配制 | 第23-25页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第25页 |
| 2.2 试验方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 副干酪乳杆菌HD1.7活化培养以及各提取物样品的制备 | 第25-26页 |
| 2.2.2 DPPH自由基清除能力的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.3 羟自由基清除能力的测定 | 第27页 |
| 2.2.4 超氧阴离子清除能力的测定 | 第27页 |
| 2.2.5 总还原能力的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.6 对亚油酸氧化抑制率的检测 | 第28页 |
| 2.2.7 金属离子螯合能力的测定 | 第28页 |
| 2.2.8 利用试剂盒测定各个酶活性 | 第28-29页 |
| 2.2.9 统计学分析 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-38页 |
| 2.3.1 DPPH自由基清除能力的测定结果 | 第30-31页 |
| 2.3.2 羟自由基清除能力的测定结果 | 第31-32页 |
| 2.3.3 超氧阴离子清除能力的测定结果 | 第32-33页 |
| 2.3.4 总还原能力的测定 | 第33-34页 |
| 2.3.5 亚油酸过氧化抑制率的检测 | 第34-36页 |
| 2.3.6 金属离子螯合能力的测定 | 第36-37页 |
| 2.3.7 利用试剂盒测定各个酶活性结果 | 第37-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 第3章 副干酪乳杆菌HD1.7在小鼠体内抗氧化活性的研究 | 第40-56页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第40-42页 |
| 3.1.1 菌种 | 第40页 |
| 3.1.2 试验动物 | 第40-41页 |
| 3.1.3 生化试剂及试剂盒 | 第41页 |
| 3.1.4 试验用溶液的配制 | 第41-42页 |
| 3.1.5 主要仪器 | 第42页 |
| 3.2 试验方法 | 第42-46页 |
| 3.2.1 副干酪乳杆菌HD1.7活化培养以及菌悬液的制备 | 第42页 |
| 3.2.2 动物分组及剂量设置 | 第42-43页 |
| 3.2.3 D-gal氧化衰老BaLb/c小鼠模型的建立 | 第43页 |
| 3.2.4 D-gal氧化衰老小鼠活动状态、体重的测量 | 第43页 |
| 3.2.5 D-gal氧化衰老小鼠肝脏、肾脏和脾脏指数的计算 | 第43页 |
| 3.2.6 D-gal氧化衰老小鼠血清和肝脏生化指标测定 | 第43-46页 |
| 3.2.7 统计学分析 | 第46页 |
| 3.3 结果与分析 | 第46-54页 |
| 3.3.1 小鼠一般状态及体重变化 | 第46-48页 |
| 3.3.2 小鼠肝脏、肾脏及脾脏指数的变化 | 第48-50页 |
| 3.3.3 D-gal氧化衰老小鼠血清和肝脏生化指标测定结果 | 第50-54页 |
| 3.4 本章小结 | 第54-56页 |
| 第4章 副干酪乳杆菌HD1.7在肉品加工中的抗氧化效果研究 | 第56-67页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第57-59页 |
| 4.1.1 菌种 | 第57页 |
| 4.1.2 试验用猪肉和配料 | 第57页 |
| 4.1.3 试验用试剂 | 第57页 |
| 4.1.4 试验用溶液的配制 | 第57-58页 |
| 4.1.5 主要仪器 | 第58-59页 |
| 4.2 试验方法 | 第59-62页 |
| 4.2.1 副干酪乳杆菌HD1.7活化培养及菌悬液的制备 | 第59页 |
| 4.2.2 风干肠的制作与取样 | 第59页 |
| 4.2.3 风干肠TBA值的测定 | 第59-60页 |
| 4.2.4 风干肠羰基含量的测定 | 第60-61页 |
| 4.2.5 风干肠巯基含量的测定 | 第61页 |
| 4.2.6 统计学分析 | 第61-62页 |
| 4.3 结果与分析 | 第62-65页 |
| 4.3.1 风干肠TBA值的测定结果 | 第62-63页 |
| 4.3.2 风干肠羰基含量的测定结果 | 第63-64页 |
| 4.3.3 风干肠巯基含量的测定结果 | 第64-65页 |
| 4.4 本章小结 | 第65-67页 |
| 第5章 讨论 | 第67-72页 |
| 5.1 副干酪乳杆菌HD1.7的体外抗氧化活性 | 第67-68页 |
| 5.2 副干酪乳杆菌HD1.7在小鼠体内的抗氧化活性 | 第68-70页 |
| 5.3 副干酪乳杆菌HD1.7对肉品的抗氧化效果 | 第70-72页 |
| 第6章 结论与展望 | 第72-74页 |
| 6.1 结论 | 第72页 |
| 6.2 创新点 | 第72-73页 |
| 6.3 展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 附录 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 攻读学位期间取得的成果 | 第84-85页 |
