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动物双歧杆菌乳亚种BZ11、BZ25的性能评价及合生元制备

摘要第5-7页
abstract第7-8页
第一章 绪论第9-19页
    1.1 双歧杆菌概述第9-11页
        1.1.1 双歧杆菌的生理特性第9页
        1.1.2 双歧杆菌的生理功能第9-11页
            1.1.2.1 调节肠道菌群第9-10页
            1.1.2.2 降胆固醇第10-11页
            1.1.2.3 抗肿瘤第11页
            1.1.2.4 延缓衰老第11页
            1.1.2.5 其他生理功能第11页
    1.2 双歧杆菌微胶囊及研究进展第11-16页
        1.2.1 双歧杆菌的菌剂产品第11-12页
            1.2.1.1 片剂第11-12页
            1.2.1.2 胶囊第12页
            1.2.1.3 膏剂第12页
            1.2.1.4 微胶囊第12页
        1.2.2 双歧杆菌微胶囊的特点和用途第12-13页
            1.2.2.1 双歧杆菌微胶囊的特性第12-13页
            1.2.2.2 双歧杆菌微胶囊的用途第13页
        1.2.3 双歧杆菌微胶囊的研究进展第13-16页
            1.2.3.1 海藻酸钠第13-14页
            1.2.3.2 蛋白质第14-16页
    1.3 合生元第16-17页
        1.3.1 合生元的定义第16页
        1.3.2 益生素第16页
        1.3.3 合生元的生理功能第16-17页
    1.4 背景及研究内容第17-19页
        1.4.1 研究背景第17页
        1.4.2 主要研究内容第17-19页
第二章 动物双歧杆菌乳亚种BZ11、BZ25的安全性评价第19-31页
    2.1 引言第19页
    2.2 材料和方法第19-24页
        2.2.1 实验材料第19-21页
            2.2.1.1 菌株第19页
            2.2.1.2 培养基第19-20页
            2.2.1.3 试剂第20-21页
            2.2.1.4 仪器及设备第21页
        2.2.2 实验方法第21-24页
            2.2.2.1 菌株的活化第21页
            2.2.2.2 菌株的鉴定第21页
            2.2.2.3 急性毒性实验第21-22页
            2.2.2.4 药敏试验第22-24页
            2.2.2.5 质粒提取第24页
            2.2.2.6 氨基脱羧酶活性的检测第24页
            2.2.2.7 溶血试验第24页
    2.3 结果与讨论第24-30页
        2.3.1 菌株鉴定第24-25页
        2.3.2 急性毒性第25-27页
        2.3.3 药敏实验第27-29页
        2.3.4 质粒提取第29页
        2.3.5 氨基脱羧酶活性检测第29-30页
        2.3.6 溶血实验第30页
    2.4 本章小结第30-31页
第三章 动物双歧杆菌乳亚种BZ11、BZ25的益生性评价第31-45页
    3.1 引言第31页
    3.2 材料与方法第31-36页
        3.2.1 材料第31-33页
            3.2.1.1 菌种第31页
            3.2.1.2 培养基第31-32页
            3.2.1.3 主要试剂第32-33页
            3.2.1.4 主要仪器及设备第33页
        3.2.2 方法第33-36页
            3.2.2.1 菌悬液的制备第33页
            3.2.2.2 酸耐受实验第33页
            3.2.2.3 胆盐耐受实验第33页
            3.2.2.4 降胆固醇实验第33-34页
            3.2.2.5 降解亚硝酸盐实验第34页
            3.2.2.6 抗氧化实验第34-36页
            3.2.2.7 产胞外多糖(EPS)第36页
    3.3 结果与讨论第36-44页
        3.3.1 酸和胆盐耐受实验第36-38页
        3.3.2 降胆固醇第38-39页
        3.3.3 降亚硝酸盐第39-40页
        3.3.4 抗氧化第40-42页
        3.3.5 胞外多糖(EPS)第42-44页
    3.4 小结第44-45页
第四章 合生元微胶囊的制备第45-58页
    4.1 引言第45-46页
    4.2 材料第46-47页
        4.2.1 主要试剂第46页
        4.2.2 主要仪器及设备第46页
        4.2.3 菌种第46页
        4.2.4 溶液的配置第46-47页
    4.3 实验方法第47-49页
        4.3.1 益生元的筛选第47页
            4.3.1.1 益生元种类的筛选第47页
            4.3.1.2 益生元用量的确定第47页
        4.3.2 微胶囊化壁材与动物双歧杆菌BZ11的生物相容性第47-48页
        4.3.3 微胶囊的制备第48-49页
            4.3.3.1 益生元菌悬液的制备第48页
            4.3.3.2 初级微胶囊的制备第48页
            4.3.3.3 包埋率的测定第48页
            4.3.3.4 壳聚糖的二次包埋第48页
            4.3.3.5 乳清蛋白的二次包埋第48-49页
            4.3.3.6 海藻酸钠的二次包埋第49页
        4.3.4 微胶囊在模拟胃液存活实验第49页
        4.3.5 微胶囊在模拟肠液中释放实验第49页
        4.3.6 微胶囊的储藏稳定性第49页
    4.4 结果与讨论第49-57页
        4.4.1 益生元的选择第49-51页
        4.4.2 微胶囊化壁材与动物双歧杆菌BZ11的生物相容性第51-52页
        4.4.3 二次包埋第52-54页
        4.4.4 抗氧化剂二次包埋微胶囊的制备第54页
        4.4.5 微胶囊在模拟胃液存活实验第54-55页
        4.4.6 微胶囊在模拟肠液中释放实验第55-56页
        4.4.7 微胶囊的储藏稳定性第56-57页
    4.5 小结第57-58页
第五章 结果与展望第58-60页
    结果第58-59页
    展望第59-60页
致谢第60-61页
References第61-69页
附录第69-71页

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