| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-20页 |
| 1 抗菌肽的功能及作用机理 | 第12-13页 |
| 1.1 抗菌肽的抗菌功能 | 第12页 |
| 1.2 抗菌肽的抗癌功能 | 第12-13页 |
| 1.3 抗菌肽的其他功能 | 第13页 |
| 2 抗菌肽的生产 | 第13-16页 |
| 2.1 天然抗菌肽的分离纯化 | 第13-15页 |
| 2.1.1 原料的选择和处理 | 第13页 |
| 2.1.2 抗菌肽分离纯化 | 第13-15页 |
| 2.2 抗菌肽的结构分析 | 第15-16页 |
| 2.2.1 一级结构分析 | 第15页 |
| 2.2.2 二级结构分析 | 第15-16页 |
| 2.3 抗菌肽的合成 | 第16页 |
| 2.4 抗菌肽的基因工程表达 | 第16页 |
| 3 鱼类抗菌肽的研究进展 | 第16-18页 |
| 3.1 鱼类抗菌肽的种类 | 第16-17页 |
| 3.1.1 高半胱氨酸含量抗菌肽 | 第16-17页 |
| 3.1.2 类似组蛋白的抗菌肽 | 第17页 |
| 3.1.3 piscidins和pleurocidins族抗菌肽 | 第17页 |
| 3.1.4 cathelicidins族抗菌肽 | 第17页 |
| 3.2 海洋鱼类抗菌肽的研究 | 第17-18页 |
| 3.3 淡水鱼类抗菌肽的研究 | 第18页 |
| 4 研究目的及意义 | 第18页 |
| 5 研究内容 | 第18-20页 |
| 第二章 草鱼鱼肠抗菌活性物质的提取 | 第20-31页 |
| 1 材料和方法 | 第20-22页 |
| 1.1 材料 | 第20页 |
| 1.1.1 原料与试剂 | 第20页 |
| 1.1.2 仪器与设备 | 第20页 |
| 1.2 方法 | 第20-22页 |
| 1.2.1 样品预处理 | 第20-21页 |
| 1.2.2 草鱼肠道抗菌物质提取条件优化 | 第21页 |
| 1.2.3 抑菌活性测定 | 第21页 |
| 1.2.4 紫外最大吸收峰测定 | 第21页 |
| 1.2.5 蛋白质含量的测定 | 第21-22页 |
| 1.2.6 对照组的设定 | 第22页 |
| 1.2.7 试验数据处理 | 第22页 |
| 2 结果与分析 | 第22-30页 |
| 2.1 单因素试验结果 | 第22-26页 |
| 2.1.1 乙酸浓度的选择 | 第22-23页 |
| 2.1.2 料液比的比例选择 | 第23-25页 |
| 2.1.3 超声处理时间的选择 | 第25-26页 |
| 2.2 正交试验结果 | 第26-30页 |
| 2.3 粗提液蛋白质含量 | 第30页 |
| 3 本章小结 | 第30-31页 |
| 第三章 草鱼鱼肠抗菌活性物质的分离纯化 | 第31-43页 |
| 1 材料和方法 | 第31-34页 |
| 1.1 材料 | 第31-32页 |
| 1.1.1 原料与试剂 | 第31页 |
| 1.1.2 仪器与设备 | 第31-32页 |
| 1.2 方法 | 第32-34页 |
| 1.2.1 初步纯化方法 | 第32页 |
| 1.2.2 小分子蛋白质SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第32-33页 |
| 1.2.3 葡聚糖凝胶层析 | 第33-34页 |
| 1.2.4 半制备C_(18)反相液相色谱的分离 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-42页 |
| 2.1 不同分离方法对纯化效果的影响 | 第34-38页 |
| 2.2 小分子蛋白质SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第38页 |
| 2.3 葡聚糖凝胶层析的分离结果 | 第38-40页 |
| 2.4 半制备C_(18)反相液相色谱的分离结果 | 第40-42页 |
| 3 本章小结 | 第42-43页 |
| 第四章 草鱼鱼肠抗菌肽纯度及结构鉴定 | 第43-50页 |
| 1 材料和方法 | 第43-44页 |
| 1.1 材料 | 第43页 |
| 1.1.1 原料与试剂 | 第43页 |
| 1.1.2 仪器与设备 | 第43页 |
| 1.2 方法 | 第43-44页 |
| 1.2.1 均匀试验设计 | 第43-44页 |
| 1.2.2 质谱图分析软件：Data Explorer 4700 | 第44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-49页 |
| 2.1 色谱条件对草鱼肠抗菌物质纯度分析的影响 | 第44-46页 |
| 2.2 草鱼肠抗菌物质一级结构分析结果 | 第46-49页 |
| 3 本章小结 | 第49-50页 |
| 第五章 草鱼鱼肠抗菌肽抗菌效果及稳定性分析 | 第50-61页 |
| 1 材料和方法 | 第50-51页 |
| 1.1 材料 | 第50页 |
| 1.1.1 原料与试剂 | 第50页 |
| 1.1.2 仪器与设备 | 第50页 |
| 1.2 方法 | 第50-51页 |
| 1.2.1 草鱼肠道抗菌肽最小抑菌浓度试验 | 第51页 |
| 1.2.2 草鱼肠道抗菌肽稳定性分析 | 第51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-59页 |
| 2.1 草鱼肠道抗菌肽最小抑菌浓度 | 第51-53页 |
| 2.2 草鱼肠道抗菌肽稳定性分析 | 第53-59页 |
| 2.2.1 温度对抗菌肽抑菌活性的影响 | 第53-55页 |
| 2.2.2 pH对抗菌肽抑菌活性的影响 | 第55-56页 |
| 2.2.3 冻融次数对抗菌肽抑菌活性的影响 | 第56-57页 |
| 2.2.4 蛋白酶对抗菌肽抑菌活性的影响 | 第57-58页 |
| 2.2.5 金属盐对抗菌肽抑菌活性的影响 | 第58-59页 |
| 3 本章小结 | 第59-61页 |
| 第六章 结论与展望 | 第61-63页 |
| 1 结论 | 第61-62页 |
| 2 本课题创新点 | 第62页 |
| 3 问题与展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 作者简介 | 第72页 |
