| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩写符号 | 第7-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 肠道菌群 | 第11-13页 |
| 1.1.1 肠道菌群的组成 | 第11页 |
| 1.1.2 肠道菌群组成的影响因素 | 第11-13页 |
| 1.2 人体肠道中的拟杆菌 | 第13-16页 |
| 1.2.1 拟杆菌的种类 | 第13-14页 |
| 1.2.2 拟杆菌的丰度 | 第14页 |
| 1.2.3 拟杆菌的生理作用 | 第14-16页 |
| 1.3 肠道中低丰度拟杆菌的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3.1 低丰度拟杆菌的分离方法 | 第16-17页 |
| 1.3.2 低丰度拟杆菌生理作用的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 论文立题背景及意义 | 第18-19页 |
| 1.5 论文的主要研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 健康人群肠道中低丰度拟杆菌筛选方法的优化建立 | 第20-30页 |
| 2.1 前言 | 第20页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第20-21页 |
| 2.2.1 试剂 | 第20页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第20-21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.3.1 粪便样品的采集与处理 | 第21页 |
| 2.3.2 拟杆菌的常规分离方法 | 第21页 |
| 2.3.3 低丰度拟杆菌的特异性筛选方法 | 第21-22页 |
| 2.3.4 细菌16srDNA鉴定 | 第22-23页 |
| 2.3.5 拟杆菌生长曲线的测定 | 第23页 |
| 2.3.6 数据统计与分析 | 第23页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第23-29页 |
| 2.4.1 常规方法分离健康人群肠道中拟杆菌种的分布情况 | 第23-24页 |
| 2.4.2 低丰度拟杆菌特异性分离方法的优化设计 | 第24页 |
| 2.4.3 低丰度拟杆菌特异性分离方法的效率分析 | 第24-27页 |
| 2.4.4 低丰度拟杆菌特异性分离方法的验证 | 第27-29页 |
| 2.5 本章小结 | 第29-30页 |
| 第三章 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对肠道菌群的的调节作用解析 | 第30-40页 |
| 3.1 前言 | 第30页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第30-31页 |
| 3.2.1 试剂 | 第30-31页 |
| 3.2.2 实验菌株及培养基 | 第31页 |
| 3.2.3 实验动物 | 第31页 |
| 3.2.4 主要仪器与设备 | 第31页 |
| 3.3 实验方法 | 第31-35页 |
| 3.3.1 拟杆菌的培养及拟杆菌剂的制备 | 第31页 |
| 3.3.2 动物实验设计 | 第31-32页 |
| 3.3.3 菌群组成的测定 | 第32-34页 |
| 3.3.4 粪便样品中短链脂肪酸含量的测定 | 第34页 |
| 3.3.5 数据统计与分析 | 第34-35页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第35-39页 |
| 3.4.1 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对正常小鼠肠道菌群组成的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.2 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对正常小鼠肠道内SCFA产量的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.3 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对LPS感染小鼠肠道菌群组成的影响 | 第37-39页 |
| 3.4.4 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对LPS感染小鼠肠道内SCFA产量的影响 | 第39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对宿主免疫的调节作用解析 | 第40-57页 |
| 4.1 前言 | 第40页 |
| 4.2 实验材料与设备 | 第40-42页 |
| 4.2.1 试剂 | 第40-41页 |
| 4.2.2 菌株及细胞 | 第41页 |
| 4.2.3 培养基 | 第41页 |
| 4.2.4 实验动物 | 第41页 |
| 4.2.5 主要仪器与设备 | 第41-42页 |
| 4.3 实验方法 | 第42-45页 |
| 4.3.1 单核细胞Thp1-XBlue的培养 | 第42页 |
| 4.3.2 细胞实验设计 | 第42-43页 |
| 4.3.3 拟杆菌的培养与灌胃拟杆菌剂的制备 | 第43页 |
| 4.3.4 动物实验设计 | 第43-44页 |
| 4.3.5 小鼠血液及结肠组织中免疫因子的测定 | 第44页 |
| 4.3.6 小鼠脾脏组织中Treg细胞的水平测定 | 第44页 |
| 4.3.7 小鼠结肠组织中NF-κB信号通路相关蛋白表达水平的测定 | 第44-45页 |
| 4.3.8 小鼠肠道通透性的测定 | 第45页 |
| 4.3.9 小鼠结肠组织切片病理观察 | 第45页 |
| 4.3.10 数据统计与分析 | 第45页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第45-55页 |
| 4.4.1 拟杆菌对Thp1-Xblue细胞中NF-κB信号通路激活水平的影响 | 第45-46页 |
| 4.4.2 拟杆菌对LPS刺激后的Thp1-XBlue细胞中NF-κB信号通路的调节作用 | 第46-47页 |
| 4.4.3 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对正常小鼠及LPS感染小鼠体内免疫因子分泌水平的影响 | 第47-49页 |
| 4.4.4 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对正常小鼠及LPS感染小鼠体内适应型免疫指标的调节作用 | 第49-52页 |
| 4.4.5 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对正常小鼠及LPS感染小鼠体内结肠组织中NF-κB信号通路激活水平的影响 | 第52-54页 |
| 4.4.6 卵形拟杆菌及脆弱拟杆菌对正常小鼠及LPS感染小鼠体内肠道通透性及结肠组织完整性的影响 | 第54-55页 |
| 4.5 本章小结 | 第55-57页 |
| 第五章 卵形拟杆菌ELH-B2及脆弱拟杆菌HCK-B3的安全性评价 | 第57-73页 |
| 5.1 前言 | 第57页 |
| 5.2 实验材料与设备 | 第57-58页 |
| 5.2.1 试剂 | 第57-58页 |
| 5.2.2 菌株及培养基 | 第58页 |
| 5.2.3 实验动物 | 第58页 |
| 5.2.4 主要仪器与设备 | 第58页 |
| 5.3 实验方法 | 第58-61页 |
| 5.3.1 拟杆菌的培养与灌胃拟杆菌剂的制备 | 第58页 |
| 5.3.2 拟杆菌溶血性及运动型的测定 | 第58-59页 |
| 5.3.3 拟杆菌全基因组测序 | 第59页 |
| 5.3.4 拟杆菌潜在毒力基因及抗生素耐受基因的鉴定 | 第59-60页 |
| 5.3.5 抗生素对拟杆菌最低抑制浓度(MIC)的测定 | 第60页 |
| 5.3.6 动物实验设计 | 第60-61页 |
| 5.3.7 小鼠血常规及肝功能相关指标的测定 | 第61页 |
| 5.3.8 小鼠血液中细胞因子的测定 | 第61页 |
| 5.3.9 小鼠组织切片病理观察 | 第61页 |
| 5.3.10 数据统计与分析 | 第61页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第61-71页 |
| 5.4.1 卵形拟杆菌ELH-B2及脆弱拟杆菌HCK-B3的形态学特征 | 第61-62页 |
| 5.4.2 卵形拟杆菌ELH-B2及脆弱拟杆菌HCK-B3的亲缘特性 | 第62-63页 |
| 5.4.3 卵形拟杆菌ELH-B2及脆弱拟杆菌HCK-B3的潜在毒力基因 | 第63-66页 |
| 5.4.4 卵形拟杆菌ELH-B2及脆弱拟杆菌HCK-B3的抗生素耐受性 | 第66-67页 |
| 5.4.5 卵形拟杆菌ELH-B2及脆弱拟杆菌HCK-B3的体内安全性评价 | 第67-71页 |
| 5.5 本章小结 | 第71-73页 |
| 主要结论与展望 | 第73-76页 |
| 论文创新点 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-91页 |
| 附录Ⅰ：作者在攻读博士学位期间取得的成果 | 第91-92页 |
| 附录Ⅱ | 第92-93页 |
| 附录Ⅲ | 第93-100页 |
