| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第16-37页 |
| 1.1 真菌多糖的研究概况 | 第16-26页 |
| 1.1.1 多糖的提取分离 | 第16-17页 |
| 1.1.2 真菌多糖的结构 | 第17页 |
| 1.1.3 真菌多糖的免疫活性 | 第17-18页 |
| 1.1.4 多糖免疫活性与结构关系研究进展 | 第18-21页 |
| 1.1.5 真菌多糖免疫调节机制研究进展 | 第21-26页 |
| 1.2 肠道菌群在宿主健康中的作用 | 第26-32页 |
| 1.2.1 肠道菌群与免疫系统发育 | 第26-27页 |
| 1.2.2 肠道菌群与免疫功能调节 | 第27-29页 |
| 1.2.3 肠道菌群与代谢综合征 | 第29-30页 |
| 1.2.4 肠道菌群与肠炎(Inflammatory bowel disease, IBD) | 第30-31页 |
| 1.2.5 肠道菌群与其他疾病的发生 | 第31-32页 |
| 1.3 真菌多糖口服作用机制的研究进展 | 第32-33页 |
| 1.4 本课题的立题依据 | 第33-37页 |
| 1.4.1 立题依据 | 第33-36页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第36-37页 |
| 第二章 香菇多糖 L2 对小鼠免疫功能及肠道菌群的影响 | 第37-110页 |
| 2.1 前言 | 第37-38页 |
| 2.2 实验材料与试剂 | 第38-40页 |
| 2.3 主要仪器与设备 | 第40-41页 |
| 2.4 实验方法 | 第41-57页 |
| 2.4.1 香菇多糖 L2 的核磁共振分析 | 第41页 |
| 2.4.2 动物来源及分组 | 第41-44页 |
| 2.4.3 脾淋巴细胞转化实验（MTT 法） | 第44页 |
| 2.4.4 NK 细胞活性测定（MTT 法） | 第44-45页 |
| 2.4.5 胸腺和脾脏指数 | 第45页 |
| 2.4.6 血清免疫因子检测 | 第45页 |
| 2.4.7 小肠及结肠内容物中分泌型 IgA 的测定（SIgA） | 第45页 |
| 2.4.8 肠道微生物多样性检测 | 第45-56页 |
| 2.4.9 数据统计 | 第56-57页 |
| 2.5 实验结果 | 第57-103页 |
| 2.5.1 L2 的 NMR 结果 | 第57-58页 |
| 2.5.2 L2 对成年小鼠体征的影响 | 第58页 |
| 2.5.3 L2 对成年小鼠胸腺指数和脾脏指数的影响 | 第58页 |
| 2.5.4 L2 对成年小鼠脾淋巴细胞增殖和 NK 细胞杀伤活性的影响 | 第58-59页 |
| 2.5.5 L2 对成年小鼠外周血液免疫因子的影响 | 第59-60页 |
| 2.5.6 L2 对成年小鼠肠道菌群组成的影响 | 第60-81页 |
| 2.5.7 L2 对成年小鼠肠道菌群组成空间的影响 | 第81-88页 |
| 2.5.8 L2 对老龄小鼠体征的影响 | 第88页 |
| 2.5.9 L2 对老龄小鼠胸腺指数和脾脏指数的影响 | 第88页 |
| 2.5.10 L2 对老龄小鼠脾淋巴细胞和 NK 细胞活性的影响 | 第88-89页 |
| 2.5.11 L2 对老龄小鼠血清免疫因子的影响 | 第89-90页 |
| 2.5.12 老年小鼠粪便样本微生物测序及 OTU 分类结果 | 第90-91页 |
| 2.5.13 L2 对老龄小鼠肠道细菌组成丰富度、多样性及均匀性的影响 | 第91-93页 |
| 2.5.14 L2 对老龄小鼠肠道细菌组成的影响 | 第93-103页 |
| 2.6 结果讨论 | 第103-108页 |
| 2.7 本章小结 | 第108-110页 |
| 第三章 香菇多糖 L2 对 CACO-2 免疫因子分泌和肠道免疫相关基因表达的影响 | 第110-144页 |
| 3.1 前言 | 第110页 |
| 3.2 实验试剂与材料 | 第110-111页 |
| 3.2.1 实验试剂及材料 | 第110-111页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第111页 |
| 3.3 实验方法 | 第111-118页 |
| 3.3.1 体外小肠（caco-2 模型）模型的建立 | 第111-112页 |
| 3.3.2 不同浓度香菇多糖 L2 对 Caco-2 刺激细胞免疫因子分泌 | 第112页 |
| 3.3.3 LPS 刺激下香菇多糖 L2 对 Caco-2 细胞免疫因子的分泌 | 第112-113页 |
| 3.3.4 LPS 刺激下多糖对 Caco-2/RAW264.7 共培养体系免疫因子的分泌 | 第113页 |
| 3.3.5 肠道组织中免疫相关基因表达 RT-PCR | 第113-117页 |
| 3.3.6 数据分析与统计 | 第117-118页 |
| 3.4 实验结果 | 第118-139页 |
| 3.4.1 小肠体外模型的 Caco-2 细胞模型的建立 | 第118-120页 |
| 3.4.2 不同浓度 L2 对 Caco-2 模型免疫因子分泌的影响 | 第120-123页 |
| 3.4.3 LPS 刺激下 L2 对 Caco-2 细胞模型免疫因子分泌的影响 | 第123-125页 |
| 3.4.4 LPS 刺激下 L2 对 Caco-2/RAW264.7 细胞模型免疫因子分泌的影响 | 第125-126页 |
| 3.4.5 肠道组织的 Real time PCR 扩增和熔融曲线 | 第126-127页 |
| 3.4.6 免疫相关基因表达结果 | 第127-136页 |
| 3.4.7 L2 调控基因的生物学功能网络构建 | 第136-139页 |
| 3.5 结果讨论 | 第139-142页 |
| 3.6 本章小结 | 第142-144页 |
| 第四章 香菇多糖 L2 对小鼠肠道蛋白表达的影响 | 第144-200页 |
| 4.1 前言 | 第144页 |
| 4.2 实验试剂与材料 | 第144-151页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第144-150页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第150-151页 |
| 4.3 实验方法 | 第151-162页 |
| 4.3.1 样本信息 | 第151页 |
| 4.3.2 蛋白质提取与纯化 | 第151页 |
| 4.3.3 一向等电点聚焦 | 第151-152页 |
| 4.3.4 二向 SDS-PAGE | 第152-154页 |
| 4.3.5 染色 | 第154-155页 |
| 4.3.6 凝胶的扫描和保存 | 第155-156页 |
| 4.3.7 质谱鉴定 | 第156-159页 |
| 4.3.8 质谱数据分析 | 第159页 |
| 4.3.9 Western blot 鉴定 | 第159-162页 |
| 4.3.10 差异表达蛋白的功能与互作分析 | 第162页 |
| 4.3.11 数据统计 | 第162页 |
| 4.5. 实验结果 | 第162-195页 |
| 4.5.1 结肠组织的二向电泳及质谱鉴定结果 | 第162-175页 |
| 4.5.2 小肠组织的二向电泳及质谱鉴定结果 | 第175-189页 |
| 4.5.3 结肠、小肠组织差异表达蛋白的互作网络分析 | 第189-190页 |
| 4.5.4 对结肠、小肠组织蛋白的 Western blot 验证 | 第190-195页 |
| 4.6 结果讨论 | 第195-198页 |
| 4.7 本章小结 | 第198-200页 |
| 结论与展望 | 第200-205页 |
| 1、结论 | 第200-202页 |
| 2 本论文的主要创新点 | 第202-203页 |
| 3 展望 | 第203-205页 |
| 参考文献 | 第205-233页 |
| 附录 | 第233-243页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第243-245页 |
| 致谢 | 第245-246页 |
| 附件 | 第246页 |
