| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-20页 |
| 1.1 玉米蛋白粉的综合利用现状分析 | 第13-15页 |
| 1.1.1 玉米蛋白粉的组成 | 第13页 |
| 1.1.2 玉米蛋白粉的营养价值 | 第13-14页 |
| 1.1.3 玉米蛋白粉的应用现状 | 第14-15页 |
| 1.2 食源性抗氧化肽的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.2.1 大豆源抗氧化肽 | 第15页 |
| 1.2.2 水产源抗氧化肽 | 第15页 |
| 1.2.3 蛋源抗氧化肽 | 第15-16页 |
| 1.2.4 玉米源抗氧化肽 | 第16页 |
| 1.3 影响抗氧化肽活性的高新技术的研究现状 | 第16-17页 |
| 1.3.1 超声波技术 | 第16页 |
| 1.3.2 微胶囊技术 | 第16-17页 |
| 1.3.3 高压脉冲电场技术 | 第17页 |
| 1.4 辐照技术在功能食品领域中的研究现状 | 第17-18页 |
| 1.5 本文主要研究内容 | 第18-20页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第18页 |
| 1.5.2 研究路线 | 第18-20页 |
| 第2章 高效水解玉米蛋白粉的关键技术研究 | 第20-35页 |
| 2.1 材料与设备 | 第20-21页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第20页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 玉米蛋白粉的酶解方法 | 第21页 |
| 2.2.2 水解度的测定方法 | 第21-22页 |
| 2.2.3 蛋白酶可控酶解技术的单因素实验设计 | 第22页 |
| 2.2.4 蛋白酶可控酶解技术的响应面实验设计 | 第22-23页 |
| 2.2.5 电子束辐照技术对玉米蛋白粉水解度的影响 | 第23页 |
| 2.2.6 场发射电子扫描实验 | 第23页 |
| 2.2.7 数据分析方法 | 第23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-33页 |
| 2.3.1 单因素实验结果 | 第23-28页 |
| 2.3.2 响应面优化实验结果 | 第28-31页 |
| 2.3.3 不同辐照剂量对玉米蛋白粉水解度的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.4 场发射电子扫描结果分析 | 第32-33页 |
| 2.4 讨论 | 第33-34页 |
| 2.5 本章小结 | 第34-35页 |
| 第3章 高活性玉米抗氧化肽（CAPS-1）的优选 | 第35-44页 |
| 3.1 材料与设备 | 第35-36页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第35页 |
| 3.1.2 实验动物 | 第35-36页 |
| 3.1.3 仪器与设备 | 第36页 |
| 3.2 实验方法 | 第36-39页 |
| 3.2.1 超滤分离技术 | 第36-37页 |
| 3.2.2 DPPH 清除率的测定方法 | 第37页 |
| 3.2.3 体内抗氧化活性评价方法 | 第37-38页 |
| 3.2.4 氨基酸成分及含量分析 | 第38页 |
| 3.2.5 数据处理与分析方法 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-42页 |
| 3.3.1 超滤液各组分的 DPPH 清除率测定结果 | 第39页 |
| 3.3.2 体内抗氧化活性评价结果 | 第39-41页 |
| 3.3.3 氨基酸成分及含量分析结果 | 第41-42页 |
| 3.4 讨论 | 第42-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第4章 高活性玉米抗氧化肽（CAPS-1）的安全毒理学评价 | 第44-52页 |
| 4.1 材料与设备 | 第44-45页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第44页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第44页 |
| 4.1.3 仪器与设备 | 第44-45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 4.2.1 实验动物饲养与分组 | 第45页 |
| 4.2.2 受试小鼠精子畸形率的检测方法 | 第45-46页 |
| 4.2.3 受试小鼠骨髓微核率的检测方法 | 第46页 |
| 4.2.4 受试小鼠 NK 细胞活性的检测方法 | 第46页 |
| 4.2.5 受试小鼠脏器系数的检测方法 | 第46页 |
| 4.2.6 受试小鼠体重均值、日摄食量和日饮水量的监测方法 | 第46页 |
| 4.2.7 数据处理与分析方法 | 第46-47页 |
| 4.3 结果与分析 | 第47-49页 |
| 4.3.1 CAPS-1 不同剂量对受试小鼠精子畸形率和骨髓微核率的影响..35 | 第47页 |
| 4.3.2 CAPS-1 不同剂量对受试小鼠 NK 细胞活性的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.3 CAPS-1 不同剂量对受试小鼠脏器系数的影响 | 第48页 |
| 4.3.4 CAPS-1 不同剂量对受试小鼠体重均值的影响 | 第48-49页 |
| 4.3.5 CAPS-1 不同剂量对受试小鼠日摄食量和日饮水量的影响 | 第49页 |
| 4.4 讨论 | 第49-50页 |
| 4.5 本章小结 | 第50-52页 |
| 第5章 玉米抗氧化肽（CAPS-1）分离制备高活性因子的研究 | 第52-58页 |
| 5.1 材料与设备 | 第52-53页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第52页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第52-53页 |
| 5.2 实验方法 | 第53-54页 |
| 5.2.1 CAPS-1 的最大吸收波长检测方法 | 第53页 |
| 5.2.2 CAPS-1 的 Sephadex G-25 凝胶色谱分离方法 | 第53页 |
| 5.2.3 DPPH 清除率的测定方法 | 第53页 |
| 5.2.4 氨基酸成分及含量分析 | 第53-54页 |
| 5.2.5 数据处理与分析方法 | 第54页 |
| 5.3 结果与分析 | 第54-56页 |
| 5.3.1 CAPS-1 的最大吸收波长检测结果 | 第54页 |
| 5.3.2 CAPS-1 的 Sephadex G-25 凝胶色谱分离图谱分析 | 第54-55页 |
| 5.3.3 DPPH 清除率的测定结果 | 第55-56页 |
| 5.3.4 氨基酸成分及含量分析结果 | 第56页 |
| 5.4 讨论 | 第56-57页 |
| 5.5 本章小结 | 第57-58页 |
| 第6章 基于高压脉冲电场技术提高玉米抗氧化肽活性的研究 | 第58-67页 |
| 6.1 材料与设备 | 第58页 |
| 6.1.1 材料与试剂 | 第58页 |
| 6.1.2 仪器与设备 | 第58页 |
| 6.2 实验方法 | 第58-60页 |
| 6.2.1 高压脉冲电场处理实验 | 第58-59页 |
| 6.2.2 单因素实验设计 | 第59页 |
| 6.2.3 响应面实验设计 | 第59-60页 |
| 6.2.4 DPPH 清除率的测定方法 | 第60页 |
| 6.2.5 中红外光谱（MIR）分析 | 第60页 |
| 6.2.6 数据处理与分析方法 | 第60页 |
| 6.3 结果与分析 | 第60-65页 |
| 6.3.1 PEF 的单因素实验结果 | 第60-62页 |
| 6.3.2 PEF 的响应面实验结果 | 第62-65页 |
| 6.3.3 MIR 分析结果 | 第65页 |
| 6.4 讨论 | 第65-66页 |
| 6.5 本章小结 | 第66-67页 |
| 第7章 结论 | 第67-70页 |
| 7.1 全文结论 | 第67-68页 |
| 7.2 创新点 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-76页 |
| 导师简介 | 第76-77页 |
| 作者简介 | 第77-78页 |
| 在学期间所取得的科研成果 | 第78-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
