鸡蛋清中溶菌酶的提取及改性研究
| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-17页 |
| 1.1 溶菌酶的研究进展 | 第9-16页 |
| 1.1.1 溶菌酶的分类 | 第9-10页 |
| 1.1.2 溶菌酶的抗菌谱 | 第10页 |
| 1.1.3 溶菌酶的结构 | 第10-11页 |
| 1.1.4 溶菌酶的性质 | 第11页 |
| 1.1.5 溶菌酶的作用机理 | 第11页 |
| 1.1.6 溶菌酶的应用 | 第11-13页 |
| 1.1.7 溶菌酶的提取方法 | 第13-14页 |
| 1.1.8 溶菌酶的改性 | 第14-16页 |
| 1.2 本研究的目的、意义及主要内容 | 第16-17页 |
| 1.2.1 主要研究目的及意义 | 第16页 |
| 1.2.2 主要研究内容 | 第16-17页 |
| 2 实验材料与方法 | 第17-24页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第17页 |
| 2.2 实验仪器 | 第17页 |
| 2.3 实验方法 | 第17-24页 |
| 2.3.1 实验检测分析方法 | 第17-19页 |
| 2.3.2 离子交换法提取溶菌酶 | 第19-20页 |
| 2.3.3 改性酶制备条件的优化 | 第20-21页 |
| 2.3.4 改性酶的抑菌性研究 | 第21-22页 |
| 2.3.5 酶学性质实验 | 第22-23页 |
| 2.3.6 疏水性及结构测定 | 第23-24页 |
| 3 结果与讨论 | 第24-55页 |
| 3.1 阳离子交换法提取溶菌酶 | 第24-27页 |
| 3.1.1 树脂用量对酶提取效果的影响 | 第24页 |
| 3.1.2 吸附时间对酶提取效果的影响 | 第24-25页 |
| 3.1.3 洗脱液浓度对酶提取效果的影响 | 第25-26页 |
| 3.1.4 洗脱时间对酶提取效果的影响 | 第26页 |
| 3.1.5 洗脱次数对酶提取效果的影响 | 第26-27页 |
| 3.1.6 正交试验 | 第27页 |
| 3.2 肉桂酸改性酶制备条件的优化 | 第27-30页 |
| 3.2.1 有机酸添加量对酶改性效果的影响 | 第27-28页 |
| 3.2.2 pH 对酶改性效果的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.3 EDAC 用量对酶改性效果的影响 | 第29页 |
| 3.2.4 反应时间对酶改性效果的影响 | 第29-30页 |
| 3.2.5 正交试验 | 第30页 |
| 3.3 咖啡酸改性酶制备条件的优化 | 第30-34页 |
| 3.3.1 有机酸添加量对酶改性效果的影响 | 第30-31页 |
| 3.3.2 pH 对酶改性效果的影响 | 第31-32页 |
| 3.3.3 EDAC 用量对酶改性效果的影响 | 第32页 |
| 3.3.4 反应时间对酶改性效果的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.5 正交试验 | 第33-34页 |
| 3.4 对香豆酸改性酶制备条件的优化 | 第34-37页 |
| 3.4.1 有机酸添加量对酶改性效果的影响 | 第34-35页 |
| 3.4.2 pH 对酶改性效果的影响 | 第35页 |
| 3.4.3 EDAC 用量对酶改性效果的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.4 反应时间对酶改性效果的影响 | 第36页 |
| 3.4.5 正交试验 | 第36-37页 |
| 3.5 抑菌性结果与讨论 | 第37-43页 |
| 3.5.1 抑菌圈的测定 | 第37-39页 |
| 3.5.2 最小抑菌浓度（MIC）的测定 | 第39-40页 |
| 3.5.3 温度对酶抑菌效果的测定 | 第40-42页 |
| 3.5.4 pH 对酶抑菌效果的测定 | 第42-43页 |
| 3.6 酶学性质结果与讨论 | 第43-50页 |
| 3.6.1 最适 pH 的测定 | 第43页 |
| 3.6.2 最适温度的测定 | 第43-44页 |
| 3.6.3 酸碱稳定性测定 | 第44-46页 |
| 3.6.4 热稳定性测定 | 第46-48页 |
| 3.6.5 金属离子稳定性测定 | 第48-49页 |
| 3.6.6 表面活性剂稳定性测定 | 第49-50页 |
| 3.7 疏水性及结构测定 | 第50-55页 |
| 3.7.1 疏水性测定 | 第50-51页 |
| 3.7.2 傅里叶红外光谱测定 | 第51-55页 |
| 4 结论与展望 | 第55-57页 |
| 4.1 主要结论 | 第55-56页 |
| 4.2 展望 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第62页 |
