| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章 引言 | 第12-24页 |
| 1.1 岩藻聚糖概述 | 第12-18页 |
| 1.1.1 岩藻聚糖的组成和结构 | 第12-13页 |
| 1.1.2 岩藻聚糖的生物活性研究进展 | 第13-15页 |
| 1.1.3 结构对岩藻聚糖生物活性的影响 | 第15-16页 |
| 1.1.4 岩藻聚糖的降解 | 第16-18页 |
| 1.2 硫酸多糖分子量的测定方法 | 第18页 |
| 1.3 硫酸多糖抑菌活性的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.4 冷鲜肉保鲜 | 第19-21页 |
| 1.4.1 化学保鲜剂 | 第19页 |
| 1.4.2 天然保鲜剂 | 第19-21页 |
| 1.5 论文立题依据、目的及主要研究内容 | 第21-24页 |
| 1.5.1 论文立题依据和目的 | 第21-22页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第22-24页 |
| 第2章 硫酸酯化对测定多糖分子量的干扰性研究 | 第24-30页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25页 |
| 2.2.1 特性粘度[η]的测定 | 第25页 |
| 2.2.2 粘度法测定多糖分子量 | 第25页 |
| 2.2.3 凝胶柱层析法测定多糖分子量 | 第25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-28页 |
| 2.3.1 葡聚糖及葡聚糖硫酸酯的流变特性比较 | 第25-26页 |
| 2.3.2 硫酸酯化对粘度法测定多糖分子量的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.3 硫酸酯化对凝胶柱层析法测定多糖分子量的影响 | 第27-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-29页 |
| 2.5 本章小节 | 第29-30页 |
| 第3章 低分子量岩藻聚糖的制备及其抑菌活性研究 | 第30-44页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第30页 |
| 3.1.2 供试菌种 | 第30页 |
| 3.1.3 主要实验试剂 | 第30-31页 |
| 3.1.4 主要仪器设备 | 第31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 3.2.1 红外辐照降解岩藻聚糖 | 第31页 |
| 3.2.2 高温高压降解岩藻聚糖 | 第31-33页 |
| 3.2.3 抑菌实验 | 第33-34页 |
| 3.2.4 岩藻聚糖的干燥 | 第34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-43页 |
| 3.3.1 红外辐照降解岩藻聚糖 | 第34-35页 |
| 3.3.2 高温高压降解岩藻聚糖 | 第35-39页 |
| 3.3.3 低分子量岩藻聚糖的抑菌活性 | 第39-41页 |
| 3.3.4 低分子量岩藻聚糖对肠道益生菌的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.5 岩藻聚糖的干燥 | 第42-43页 |
| 3.4 本章小节 | 第43-44页 |
| 第4章 岩藻聚糖的抑菌机理研究 | 第44-62页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第44-45页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第44页 |
| 4.1.2 供试菌株 | 第44页 |
| 4.1.3 主要实验试剂 | 第44-45页 |
| 4.1.4 主要仪器设备 | 第45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 4.2.1 分子量对岩藻聚糖抑菌活性的影响 | 第45-46页 |
| 4.2.2 硫酸基团对岩藻聚糖抑菌活性的影响 | 第46页 |
| 4.2.3 岩藻聚糖对细胞膜完整性的影响 | 第46-47页 |
| 4.2.4 岩藻聚糖对细胞膜蛋白的影响 | 第47页 |
| 4.2.5 FT-IR检测岩藻聚糖对菌体表面生物大分子的影响 | 第47页 |
| 4.2.6 扫描电镜 | 第47页 |
| 4.3 结果与分析 | 第47-61页 |
| 4.3.1 分子量对岩藻聚糖抑菌活性的影响 | 第47-52页 |
| 4.3.2 硫酸基团含量对岩藻聚糖抑菌活性的影响 | 第52-54页 |
| 4.3.3 岩藻聚糖对细胞膜完整性的影响 | 第54-56页 |
| 4.3.4 岩藻聚糖对细菌膜蛋白的影响 | 第56-57页 |
| 4.3.5 FT-IR检测岩藻聚糖对菌体生物大分子基团的影响 | 第57-59页 |
| 4.3.6 扫描电镜 | 第59-61页 |
| 4.4 本章小节 | 第61-62页 |
| 第5章 岩藻聚糖－海藻酸钠复合物延长冷鲜猪肉货架期的应用效果研究 | 第62-71页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第62-63页 |
| 5.1.1 实验原料 | 第62页 |
| 5.1.2 供试菌种 | 第62页 |
| 5.1.3 主要仪器设备 | 第62-63页 |
| 5.2 实验方法 | 第63-64页 |
| 5.2.1 岩藻聚糖―海藻酸钠复配比的确定 | 第63页 |
| 5.2.2 猪肉保鲜 | 第63-64页 |
| 5.3 结果与分析 | 第64-70页 |
| 5.3.1 岩藻聚糖-海藻酸钠复合物最佳复配比的确定 | 第64-65页 |
| 5.3.2 岩藻聚糖-海藻酸钠复合物对冷鲜猪肉的保鲜效果图片展示 | 第65-66页 |
| 5.3.3 感官评价数理统计结果 | 第66-67页 |
| 5.3.4 保鲜过程中猪肉汁液流失率的变化 | 第67-68页 |
| 5.3.5 保鲜过程中猪肉pH的变化 | 第68-69页 |
| 5.3.6 保鲜过程中菌落总数的变化 | 第69-70页 |
| 5.4 本章小节 | 第70-71页 |
| 第6章 结论与展望 | 第71-74页 |
| 6.1 主要结论 | 第71-72页 |
| 6.1.1 硫酸酯化对多糖分子量测定的干扰性 | 第71页 |
| 6.1.2 低分子量岩藻聚糖的制备及其抑菌活性 | 第71页 |
| 6.1.3 岩藻聚糖的抑菌机理 | 第71-72页 |
| 6.1.4 岩藻聚糖－海藻酸钠复合物应用于冷鲜猪肉的保鲜 | 第72页 |
| 6.2 创新点 | 第72页 |
| 6.3 展望 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第83页 |
