| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 第1章 引言 | 第13-23页 |
| 1.1 羊栖菜及羊栖菜多糖的研究进展 | 第13-15页 |
| 1.1.1 羊栖菜概况 | 第13页 |
| 1.1.2 羊栖菜的化学组成 | 第13-15页 |
| 1.2 降血脂及胆汁酸的研究进展 | 第15-18页 |
| 1.2.1 降血脂的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.2.2 胆汁酸的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3 多糖的分离纯化 | 第18-19页 |
| 1.4 RAW264.7巨噬细胞 | 第19页 |
| 1.5 本课题研究背景及意义 | 第19-21页 |
| 1.6 本课题研究内容 | 第21-23页 |
| 第2章 羊栖菜多糖的提取及复合酶法降解多糖的工艺优化 | 第23-41页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第23-25页 |
| 2.1.1 实验材料与试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 羊栖菜多糖的提取及制备 | 第25-27页 |
| 2.2.2 羊栖菜粗多糖的降解 | 第27-30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-40页 |
| 2.3.1 硫酸-苯酚法测总多糖含量 | 第30页 |
| 2.3.2 DNS法测还原糖 | 第30-31页 |
| 2.3.3 复合酶解羊栖菜粗多糖的单因素实验结果 | 第31-34页 |
| 2.3.4 响应面优化实验结果 | 第34-39页 |
| 2.3.5 复合酶反应时间的确定 | 第39-40页 |
| 2.4 小结 | 第40-41页 |
| 第3章 羊栖菜多糖及其酶解产物活性的研究 | 第41-64页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第41-43页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第42-43页 |
| 3.1.2 实验设备 | 第43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-49页 |
| 3.2.1 羊栖菜多糖的理化性质分析 | 第43-47页 |
| 3.2.2 羊栖菜多糖体外抗氧化实验 | 第47-48页 |
| 3.2.3 胆酸结合活性试验 | 第48-49页 |
| 3.3 结果与分析 | 第49-63页 |
| 3.3.1 羊栖菜多糖的理化性质分析 | 第49-56页 |
| 3.3.2 体外抗氧化研究 | 第56-61页 |
| 3.3.3 体外胆酸结合能力 | 第61-63页 |
| 3.4 本章小结 | 第63-64页 |
| 第4章 复合酶解多糖的分离纯化与各纯化组分对RAW264.7细胞免疫调节活性的研究 | 第64-96页 |
| 4.1 实验材料及设备 | 第64-66页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第65-66页 |
| 4.1.2 实验设备 | 第66页 |
| 4.2 实验方法 | 第66-69页 |
| 4.2.1 DEAE-52阴离子交换层析分离羊栖菜复合酶解多糖 | 第66-67页 |
| 4.2.2 Sephadex G-100凝胶纯化羊栖菜酶解多糖粗分离物 | 第67页 |
| 4.2.3 各纯化组分分析 | 第67-68页 |
| 4.2.4 各纯化组分的体外抗氧化活性研究 | 第68页 |
| 4.2.5 各纯化组分对RAW264.7细胞的免疫调节的活性研究 | 第68-69页 |
| 4.3 结果与分析 | 第69-94页 |
| 4.3.1 DEAE-52纤维素柱层析分离结果 | 第69-70页 |
| 4.3.2 Sephadex G-100柱层析纯化结果 | 第70-72页 |
| 4.3.3 各纯化组分分析结果 | 第72-80页 |
| 4.3.4 各纯化组分的体外抗氧化活性研究 | 第80-85页 |
| 4.3.5 各纯化组分对RAW264.7细胞的免疫调节的活性研究 | 第85-94页 |
| 4.4 本章小结 | 第94-96页 |
| 第5章 结论、创新点与展望 | 第96-100页 |
| 5.1 结论 | 第96-98页 |
| 5.2 创新点 | 第98页 |
| 5.3 展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-107页 |
| 附录一 缩略语表 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
