| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第17-33页 |
| 1.1 前言 | 第17页 |
| 1.2 桑葚概况 | 第17-22页 |
| 1.2.1 桑葚基本情况 | 第17-18页 |
| 1.2.2 桑葚开发利用现状 | 第18页 |
| 1.2.3 桑葚有效化学成分分析 | 第18-20页 |
| 1.2.4 桑葚的生理活性研究进展 | 第20-22页 |
| 1.3 糖尿病防治与多糖 | 第22-24页 |
| 1.3.1 糖尿病概述 | 第22-23页 |
| 1.3.2 糖尿病的治疗 | 第23-24页 |
| 1.3.3 多糖与糖尿病 | 第24页 |
| 1.4 多糖消化酵解 | 第24-25页 |
| 1.5 本课题的研究目标、内容及技术路线 | 第25-26页 |
| 1.5.1 研究目标 | 第25页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第26页 |
| 参考文献 | 第26-33页 |
| 第二章 优化提取桑葚多糖及其体外抗氧化、降血糖活性 | 第33-57页 |
| 2.1 前言 | 第33页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第33-34页 |
| 2.2.1 原料与试剂 | 第33-34页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第34页 |
| 2.3 实验步骤 | 第34-40页 |
| 2.3.1 桑葚预处理 | 第34-35页 |
| 2.3.2 桑葚基本成分测定 | 第35页 |
| 2.3.3 超声辅助提取桑葚多糖 | 第35页 |
| 2.3.4 桑葚多糖中总糖含量测定 | 第35页 |
| 2.3.5 桑葚多糖脱蛋白脱色处理 | 第35-36页 |
| 2.3.6 超声提取桑葚多糖工艺条件优化 | 第36页 |
| 2.3.7 桑葚多糖化学组成分析 | 第36-37页 |
| 2.3.8 红外光谱测定 | 第37页 |
| 2.3.9 抗氧化活性评价 | 第37-39页 |
| 2.3.10 降血糖活性评价 | 第39-40页 |
| 2.3.11 统计分析 | 第40页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第40-52页 |
| 2.4.1 桑葚基本成分 | 第40页 |
| 2.4.2 葡萄糖标准曲线 | 第40-41页 |
| 2.4.3 不同条件对桑葚多糖提取率的影响 | 第41-42页 |
| 2.4.4 响应面法优化超声提取桑葚多糖的工艺条件 | 第42-47页 |
| 2.4.5 化学成分分析 | 第47页 |
| 2.4.6 红外光谱分析 | 第47-48页 |
| 2.4.7 抗氧化活性分析 | 第48-50页 |
| 2.4.8 降血糖活性分析 | 第50-52页 |
| 2.5 本章小结 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 第三章 桑葚多糖不同组分的结构特征及其抗氧化、降血糖活性评价 | 第57-76页 |
| 3.1 前言 | 第57页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第57-58页 |
| 3.2.1 原料与试剂 | 第57-58页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第58页 |
| 3.3 实验步骤 | 第58-61页 |
| 3.3.1 桑葚粗多糖MFPs的制备 | 第58-59页 |
| 3.3.2 桑葚粗多糖的分离纯化 | 第59页 |
| 3.3.3 化学组成分析 | 第59-60页 |
| 3.3.4 分子量测定 | 第60页 |
| 3.3.5 红外光谱测定 | 第60页 |
| 3.3.6 三股螺旋结构测定 | 第60页 |
| 3.3.7 圆二色谱分析 | 第60-61页 |
| 3.3.8 扫描电镜测定 | 第61页 |
| 3.3.9 抗氧化活性测定 | 第61页 |
| 3.3.10 降血糖活性测定 | 第61页 |
| 3.3.11 统计分析 | 第61页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第61-72页 |
| 3.4.1 桑葚多糖不同组分的主要成分 | 第61-62页 |
| 3.4.2 单糖组成 | 第62-64页 |
| 3.4.3 分子量分析 | 第64-65页 |
| 3.4.4 红外光谱分析 | 第65-66页 |
| 3.4.5 扫描电镜分析 | 第66-67页 |
| 3.4.6 构象分析 | 第67-68页 |
| 3.4.7 圆二色谱分析 | 第68页 |
| 3.4.8 抗氧化活性测定 | 第68-70页 |
| 3.4.9 降血糖活性测定 | 第70-72页 |
| 3.5 本章小结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 第四章 桑葚多糖硒螯合物MFP3P-Se的制备及其抗氧化、降血糖活性研究 | 第76-99页 |
| 4.1 前言 | 第76-77页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第77-78页 |
| 4.2.1 原料与试剂 | 第77页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第77-78页 |
| 4.3 实验步骤 | 第78-83页 |
| 4.3.1 桑葚多糖凝胶柱层析纯化 | 第78页 |
| 4.3.2 桑葚多糖硒螯合物(MFP3P-Se)的制备 | 第78页 |
| 4.3.3 分子量测定 | 第78-79页 |
| 4.3.4 单糖及糖醛酸组成 | 第79页 |
| 4.3.5 高碘酸氧化与Smith降解 | 第79-80页 |
| 4.3.6 甲基化气质分析 | 第80页 |
| 4.3.7 红外光谱测定 | 第80页 |
| 4.3.8 核磁共振分析 | 第80-81页 |
| 4.3.9 扫描电镜测定 | 第81页 |
| 4.3.10 原子力显微镜测定 | 第81页 |
| 4.3.11 抗氧化活性测定 | 第81-82页 |
| 4.3.12 降血糖活性测定 | 第82-83页 |
| 4.3.13 统计分析 | 第83页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第83-93页 |
| 4.4.1 MFP3P与MFP3P-Se的制备及表征 | 第83-84页 |
| 4.4.2 单糖组成分析 | 第84-85页 |
| 4.4.3 高碘酸氧化与Smith降解 | 第85-87页 |
| 4.4.4 糖苷键链接方式分析 | 第87页 |
| 4.4.5 红外光谱分析 | 第87-88页 |
| 4.4.6 核磁共振波谱分析 | 第88-89页 |
| 4.4.7 扫描电镜测定 | 第89-90页 |
| 4.4.8 原子力显微镜测定 | 第90页 |
| 4.4.9 体外抗氧化活性测定 | 第90-91页 |
| 4.4.10 促胰岛细胞RIN-m5F增值与胰岛素释放 | 第91-92页 |
| 4.4.11 HepG2细胞毒性及葡萄糖吸收 | 第92-93页 |
| 4.5 本章小结 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-99页 |
| 第五章 桑葚多糖MFPs体外模拟消化过程中的变化及其对脂质氧化分解的影响 | 第99-116页 |
| 5.1 前言 | 第99页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第99-100页 |
| 5.2.1 原料与试剂 | 第99页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第99-100页 |
| 5.3 实验步骤 | 第100-104页 |
| 5.3.1 桑葚多糖(MFPs)制备 | 第100页 |
| 5.3.2 化学成分分析 | 第100页 |
| 5.3.3 模拟口腔消化多糖 | 第100-101页 |
| 5.3.4 模拟胃部消化多糖 | 第101-102页 |
| 5.3.5 模拟肠道消化多糖 | 第102页 |
| 5.3.6 消化液中多糖分子量的测定 | 第102页 |
| 5.3.7 游离单糖测定 | 第102页 |
| 5.3.8 还原糖含量测定 | 第102-103页 |
| 5.3.9 体外模拟消化体系中MFPs抑制脂质氧化分解 | 第103-104页 |
| 5.3.10 统计分析 | 第104页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第104-112页 |
| 5.4.1 桑葚多糖的组成 | 第104-105页 |
| 5.4.2 口腔唾液消化后多糖MFPs相对分子量变化 | 第105-106页 |
| 5.4.3 胃液消化后多糖MFPs相对分子量变化 | 第106-107页 |
| 5.4.4 肠液消化后多糖MFPs相对分子量变化 | 第107-108页 |
| 5.4.5 还原糖含量 | 第108-109页 |
| 5.4.6 消化过程中游离单糖的测定 | 第109-110页 |
| 5.4.7 多糖MFPs对油脂乳液流变特性的影响 | 第110-111页 |
| 5.4.8 多糖MFPs抑制脂质降解 | 第111-112页 |
| 5.5 本章小结 | 第112页 |
| 参考文献 | 第112-116页 |
| 第六章 桑葚多糖MFPs在人体粪便菌群中体外酵解代谢特征 | 第116-132页 |
| 6.1 前言 | 第116-117页 |
| 6.2 实验材料与仪器 | 第117页 |
| 6.2.1 原料与试剂 | 第117页 |
| 6.2.2 仪器与设备 | 第117页 |
| 6.3 实验步骤 | 第117-122页 |
| 6.3.1 桑葚多糖MFPs制备 | 第117-118页 |
| 6.3.2 多糖MFPs体外酵解 | 第118页 |
| 6.3.3 pH测定 | 第118页 |
| 6.3.4 酵解产物中短链脂肪酸(SCFA)含量测定 | 第118-119页 |
| 6.3.5 碳水化合物的消耗量 | 第119页 |
| 6.3.6 碳水化合物对短链脂肪酸(SCFA)产量的贡献 | 第119页 |
| 6.3.7 肠道微生物多样性检测 | 第119-122页 |
| 6.3.8 统计分析 | 第122页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第122-128页 |
| 6.4.1 酵解过程中pH变化 | 第122-123页 |
| 6.4.2 短链脂肪酸(SCFA)的产量 | 第123-124页 |
| 6.4.3 碳水化合物消耗量 | 第124-125页 |
| 6.4.4 碳水化合物对短链脂肪酸(SCFA)产量的贡献 | 第125-126页 |
| 6.4.5 桑葚多糖对体外菌群的影响 | 第126-128页 |
| 6.5 本章小结 | 第128页 |
| 参考文献 | 第128-132页 |
| 第七章 桑葚多糖MFPs对糖尿病小鼠降血糖作用及肠道菌群影响的研究 | 第132-153页 |
| 7.1 前言 | 第132页 |
| 7.2 材料与试剂 | 第132-133页 |
| 7.2.1 实验材料 | 第132页 |
| 7.2.2 实验动物 | 第132页 |
| 7.2.3 主要试剂 | 第132页 |
| 7.2.4 主要仪器设备 | 第132-133页 |
| 7.3 试验方法 | 第133-136页 |
| 7.3.1 实验设计与分组 | 第133页 |
| 7.3.2 小鼠糖耐量测定 | 第133页 |
| 7.3.3 小鼠血液、组织采集及脏器指数测定 | 第133页 |
| 7.3.4 小鼠生理指标测定 | 第133-134页 |
| 7.3.5 组织形态学观察 | 第134页 |
| 7.3.6 肠道微生物多样性检测 | 第134-136页 |
| 7.3.7 统计分析 | 第136页 |
| 7.4 结果与讨论 | 第136-149页 |
| 7.4.1 小鼠饮食量及饮水量变化 | 第136-138页 |
| 7.4.2 桑葚多糖对小鼠的体重及其血糖水平的影响 | 第138页 |
| 7.4.3 桑葚多糖对小鼠糖耐量的影响 | 第138-139页 |
| 7.4.4 桑葚多糖对小鼠脏器指数的影响 | 第139-140页 |
| 7.4.5 桑葚多糖对小鼠血清胰岛素的影响 | 第140页 |
| 7.4.6 桑葚多糖对糖尿病小鼠的抗氧化酶活性影响 | 第140-141页 |
| 7.4.7 桑葚多糖对糖尿病小鼠血脂成分的影响 | 第141-143页 |
| 7.4.8 病理组织学分析 | 第143-145页 |
| 7.4.9 桑葚多糖对小鼠肠道菌群生物学组成的影响 | 第145-149页 |
| 7.5 本章小结 | 第149页 |
| 参考文献 | 第149-153页 |
| 结论与展望 | 第153-156页 |
| 一、结论 | 第153-155页 |
| 二、创新点 | 第155页 |
| 三、展望 | 第155-156页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第156-158页 |
| 致谢 | 第158-159页 |
| 附件 | 第159页 |
