| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 主要符号缩写表 | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 样品前处理技术研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1.1 分散固相萃取 | 第12页 |
| 1.1.2 固相微萃取 | 第12页 |
| 1.1.3 超临界流体萃取 | 第12-13页 |
| 1.1.4 加速溶剂萃取 | 第13页 |
| 1.1.5 浊点萃取 | 第13页 |
| 1.1.6 单滴液相微萃取 | 第13页 |
| 1.1.7 中空纤维膜液相微萃取 | 第13页 |
| 1.2 分散液液微萃取技术概述 | 第13-20页 |
| 1.2.1 分散液液微萃取技术原理概述 | 第14页 |
| 1.2.2 分散液液微萃取影响因素 | 第14-16页 |
| 1.2.3 分散液液微萃取在食品分析中的应用 | 第16-20页 |
| 1.3 本研究的目的、意义及研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 分散液液微萃取液相色谱法测定彩色小麦中α-生育酚 | 第21-32页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 材料与方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.2 色谱条件 | 第22页 |
| 2.2.3 标准品的制备 | 第22页 |
| 2.2.4 样品及样品准备 | 第22页 |
| 2.2.5 样品提取 | 第22-24页 |
| 2.2.6 方法评估 | 第24页 |
| 2.2.7 籽粒色素含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.8 统计分析 | 第24页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第24-30页 |
| 2.3.1 DLLME 萃取条件的优化 | 第24-26页 |
| 2.3.2 方法评估 | 第26-27页 |
| 2.3.3 多种提取方法结果对照 | 第27-28页 |
| 2.3.4 彩色小麦中α-生育酚含量及加标回收率测定 | 第28-29页 |
| 2.3.5 彩色小麦中α-生育酚含量与色素含量相关分析 | 第29-30页 |
| 2.4 小结 | 第30-32页 |
| 第三章 两种分散液液微萃取技术高效液相色谱法分析食用油中的双酚 A | 第32-44页 |
| 3.1 引言 | 第32-33页 |
| 3.2 材料与方法 | 第33-34页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第33页 |
| 3.2.2 色谱条件 | 第33页 |
| 3.2.3 标准品溶液的制备 | 第33页 |
| 3.2.4 样品与样品准备 | 第33-34页 |
| 3.2.5 方法验证实验 | 第34页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第34-43页 |
| 3.3.1 LLE-DLLME 萃取条件的优化 | 第34-37页 |
| 3.3.2 RP-DLLME 萃取条件的优化 | 第37-39页 |
| 3.3.3 方法验证 | 第39-40页 |
| 3.3.4 方法比较 | 第40页 |
| 3.3.5 食用油中 BPA 含量及加标回收率测定 | 第40-43页 |
| 3.4 小结 | 第43-44页 |
| 第四章 QuEChERS结合离子液体-分散液液微萃取高效液相色谱法测定食用油中酞酸酯 | 第44-54页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 实验部分 | 第44-45页 |
| 4.2.1 仪器和试剂 | 第44-45页 |
| 4.2.2 色谱条件 | 第45页 |
| 4.2.3 样品和样品准备 | 第45页 |
| 4.2.4 玻璃器皿和试剂空白控制 | 第45页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第45-53页 |
| 4.3.1 QuEChERS 过程优化 | 第45-47页 |
| 4.3.2 IL-DLLME 萃取条件的优化 | 第47-49页 |
| 4.3.3 方法验证和方法比较 | 第49-51页 |
| 4.3.4 实际样品测定 | 第51-53页 |
| 4.4 小结 | 第53-54页 |
| 第五章 总结与展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简介 | 第63页 |
