| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第9-12页 |
| 1 引言 | 第12-17页 |
| 1.1 小麦低聚肽研究现状 | 第12-13页 |
| 1.2 Caco-2 细胞 | 第13-15页 |
| 1.3 肠道上皮细胞的紧密连接 | 第15页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第15-17页 |
| 2 小麦低聚肽基本成分分析 | 第17-27页 |
| 2.1 材料和设备 | 第17-18页 |
| 2.1.1 试验材料与试剂 | 第17页 |
| 2.1.2 试验设备 | 第17-18页 |
| 2.2 试验方法 | 第18-20页 |
| 2.2.1 水分的测定—常压干燥法 | 第18页 |
| 2.2.2 灰分的测定—灼烧法 | 第18页 |
| 2.2.3 脂肪含量的测定—索氏提取法 | 第18页 |
| 2.2.4 蛋白质含量的测定—凯氏定氮法 | 第18页 |
| 2.2.5 谷氨酰胺含量分析 | 第18-19页 |
| 2.2.6 氨基酸组成分析 | 第19页 |
| 2.2.7 分子量分布分析 | 第19-20页 |
| 2.3 试验结果 | 第20-26页 |
| 2.3.1 小麦低聚肽基本成分分析 | 第20页 |
| 2.3.2 小麦低聚肽谷氨酰胺含量分析 | 第20-23页 |
| 2.3.3 小麦低聚肽氨基酸组成成分分析 | 第23页 |
| 2.3.4 小麦低聚肽分子量分布 | 第23-26页 |
| 2.4 结论 | 第26-27页 |
| 3 Caco-2 细胞模型的构造及评价 | 第27-34页 |
| 3.1 材料和设备 | 第27-28页 |
| 3.1.1 试验材料与试剂 | 第27页 |
| 3.1.2 试验设备 | 第27-28页 |
| 3.2 试验方法 | 第28-29页 |
| 3.2.1 Caco‐2 细胞生长曲线的测定 | 第28页 |
| 3.2.2 Caco‐2 细胞单层完整性的测定 | 第28页 |
| 3.2.3 Caco‐2 细胞单层极性测定 | 第28页 |
| 3.2.4 Caco‐2 细胞单层通透性验证 | 第28-29页 |
| 3.3 试验结果 | 第29-33页 |
| 3.3.1 细胞生长曲线 | 第29-30页 |
| 3.3.2 Caco‐2 细胞单层完整性的测定 | 第30-31页 |
| 3.3.3 Caco‐2 细胞单层极性测定 | 第31-32页 |
| 3.3.4 Caco‐2 细胞单层通透性验证 | 第32-33页 |
| 3.4 结论 | 第33-34页 |
| 4 小麦低聚肽对氧化应激损伤肠上皮细胞的保护作用 | 第34-42页 |
| 4.1 试验材料与试剂 | 第34-35页 |
| 4.1.1 试验设备 | 第34-35页 |
| 4.2 试验方法 | 第35-36页 |
| 4.2.1 不同剂量的小麦低聚肽对Caco‐2 细胞存活率的影响 | 第35页 |
| 4.2.2 不同剂量H2O2溶液对Caco‐2 细胞存活率的影响 | 第35页 |
| 4.2.3 小麦低聚肽对氧化应激损伤Caco-2 细胞活性的影响 | 第35页 |
| 4.2.4 小麦低聚肽对氧化应激损伤Caco-2 细胞抗氧化性的影响 | 第35-36页 |
| 4.2.5 小麦低聚肽对氧化应激损伤Caco-2 细胞屏障功能损伤的保护作用 | 第36页 |
| 4.3 结果与分析 | 第36-41页 |
| 4.3.1 不同剂量小麦低聚肽对Caco-2 细胞存活率的影响 | 第36-37页 |
| 4.3.2 不同剂量H2O2对Caco‐2 细胞存活率的影响 | 第37页 |
| 4.3.3 小麦低聚肽对氧化应激损伤Caco-2 细胞活性的影响 | 第37-38页 |
| 4.3.4 小麦低聚肽对氧化应激损伤Caco-2 细胞抗氧化的保护作用 | 第38-40页 |
| 4.3.5 小麦低聚肽对氧化应激损伤Caco-2 细胞紧密连接的保护作用 | 第40-41页 |
| 4.4 小结 | 第41-42页 |
| 5 小麦低聚肽与Gln对氧化应激损伤肠上皮细胞保护作用的比较 | 第42-48页 |
| 5.1 材料和设备 | 第42-43页 |
| 5.1.1 试验材料与试剂 | 第42页 |
| 5.1.2 试验设备 | 第42-43页 |
| 5.2 试验方法 | 第43页 |
| 5.2.1 Caco‐2 细胞培养及分组 | 第43页 |
| 5.2.2 小麦低聚肽、Gln对氧化应激损伤Caco-2 细胞活性影响的比较 | 第43页 |
| 5.2.3 小麦低聚肽、Gln对氧化应激损伤Caco-2 细胞抗氧化性的比较 | 第43页 |
| 5.2.4 小麦低聚肽、Gln对氧化应激损伤Caco-2 细胞屏障功能损伤保护作用的比较 | 第43页 |
| 5.3 结果与分析 | 第43-47页 |
| 5.3.1 小麦低聚肽、Gln对Caco-2 细胞活性影响的比较 | 第43-44页 |
| 5.3.2 小麦低聚肽、Gln对氧化应激损伤Caco-2 细胞抗氧化保护作用的比较 | 第44-46页 |
| 5.3.3 小麦低聚肽、Gln对氧化应激损伤Caco-2 细胞紧密连接的保护作用 | 第46-47页 |
| 5.4 小结 | 第47-48页 |
| 6 小麦低聚肽对氧化应激损伤肠上皮细胞的保护机制的探讨 | 第48-54页 |
| 6.1 材料和设备 | 第48-49页 |
| 6.1.1 试验材料与试剂 | 第48页 |
| 6.1.2 试验设备 | 第48-49页 |
| 6.2 试验方法 | 第49-50页 |
| 6.2.1 细胞培养及分组 | 第49页 |
| 6.2.2 引物的设计与合成 | 第49页 |
| 6.2.3 RNA的提取与纯度含量的检测 | 第49-50页 |
| 6.2.4 逆转录与Real Time PCR反应 | 第50页 |
| 6.2.5 Real Time PCR数据分析 | 第50页 |
| 6.3 结果与分析 | 第50-53页 |
| 6.3.1 Caco‐2 细胞RNA纯度及完整性结果 | 第50-51页 |
| 6.3.2 小麦低聚肽对氧化应激损伤的Caco‐2 细胞中ZO‐1、ZO‐2 mRNA的影响 | 第51-52页 |
| 6.3.3 小麦低聚肽对氧化应激损伤的Caco‐2 细胞中HO‐1 mRNA的影响 | 第52-53页 |
| 6.4 小结 | 第53-54页 |
| 7 结论 | 第54-56页 |
| 7.1 主要结论 | 第54页 |
| 7.2 论文创新性 | 第54-55页 |
| 7.3 展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 作者简介 | 第60-61页 |
| 攻读硕士期间发表论文情况 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
