| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-23页 |
| 1.1 马尾藻资源概述 | 第12页 |
| 1.1.1 马尾藻的分布 | 第12页 |
| 1.1.2 马尾藻的加工利用 | 第12页 |
| 1.2 岩藻聚糖硫酸酯研究概述 | 第12-16页 |
| 1.2.1 岩藻聚糖硫酸酯的制备、纯化 | 第12-13页 |
| 1.2.2 化学组成及结构研究 | 第13-14页 |
| 1.2.3 岩藻聚糖硫酸酯的降解 | 第14页 |
| 1.2.4 岩藻聚糖硫酸酯的生物活性及构效关系研究 | 第14-16页 |
| 1.3 血栓疾病概述 | 第16-19页 |
| 1.3.1 血栓形成机理 | 第16-17页 |
| 1.3.2 血管内皮细胞功能 | 第17-18页 |
| 1.3.3 抗血栓药物 | 第18-19页 |
| 1.4 抗血栓活性研究方法 | 第19-20页 |
| 1.4.1 抗血栓活性体内研究方法 | 第19页 |
| 1.4.2 抗血栓活性体外研究方法 | 第19-20页 |
| 1.5 岩藻聚糖硫酸酯抗血栓活性研究概况 | 第20-21页 |
| 1.6 本课题的研究目的及意义 | 第21页 |
| 1.7 课题主要研究内容 | 第21-23页 |
| 2 马尾藻岩藻聚糖硫酸酯的提取纯化、化学组成及结构分析 | 第23-41页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第23页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第23页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 马尾藻岩藻聚糖硫酸酯粗品的制备 | 第24页 |
| 2.2.2 DEAE C-52离子交换层析 | 第24页 |
| 2.2.3 H_2O_2-HAc体系自由基氧化降解 | 第24-25页 |
| 2.2.4 Superdex 75 prep grade凝胶柱层析 | 第25页 |
| 2.2.5 化学组成分析 | 第25页 |
| 2.2.6 单糖组成分析 | 第25页 |
| 2.2.7 纯度鉴定及分子量测定 | 第25-26页 |
| 2.2.8 红外光谱扫描 | 第26页 |
| 2.2.9 核磁共振分析 | 第26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-38页 |
| 2.3.1 马尾藻岩藻聚糖硫酸酯粗品的制备 | 第26页 |
| 2.3.2 DEAE C-52阴离子交换层析 | 第26-27页 |
| 2.3.3 降解后多糖的凝胶层析 | 第27页 |
| 2.3.4 化学组成分析 | 第27-30页 |
| 2.3.5 单糖组成分析 | 第30-31页 |
| 2.3.6 纯度鉴定及分子量测定 | 第31-33页 |
| 2.3.7 红外光谱分析 | 第33-35页 |
| 2.3.8 核磁共振分析 | 第35-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-39页 |
| 2.5 小结 | 第39-41页 |
| 3 马尾藻岩藻聚糖硫酸酯对血栓作用研究 | 第41-47页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第41页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第41页 |
| 3.1.2 实验动物 | 第41页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第41页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第41页 |
| 3.2 实验方法 | 第41-43页 |
| 3.2.1 体外血凝块溶解实验 | 第41-42页 |
| 3.2.2 胶原蛋白-肾上腺素诱发小鼠体内血栓形成实验 | 第42页 |
| 3.2.3 小鼠横断切尾出血实验 | 第42页 |
| 3.2.4 统计学处理 | 第42-43页 |
| 3.3 结果与分析 | 第43-45页 |
| 3.3.1 体外血凝块溶解实验 | 第43-44页 |
| 3.3.2 胶原蛋白-肾上腺素诱发小鼠体内血栓形成实验 | 第44页 |
| 3.3.3 小鼠横断切尾出血实验 | 第44-45页 |
| 3.4 讨论 | 第45-46页 |
| 3.5 小结 | 第46-47页 |
| 4 马尾藻岩藻聚糖硫酸酯对HUVEC细胞的作用研究 | 第47-67页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第47-48页 |
| 4.1.1 实验原料 | 第47页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第47页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第47-48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 4.2.1 细胞培养基本操作 | 第48页 |
| 4.2.2 HUVEC细胞生长曲线制作（MTT法） | 第48页 |
| 4.2.3 Fucoidan对HUVEC细胞增殖活性影响 | 第48-49页 |
| 4.2.4 Adr造模浓度的确定 | 第49页 |
| 4.2.5 Fucoidan对受Adr损伤的HUVEC细胞增殖影响 | 第49页 |
| 4.2.6 Fucoidan活性实验 | 第49页 |
| 4.3 统计学分析 | 第49页 |
| 4.4 结果与分析 | 第49-64页 |
| 4.4.1 HUVEC细胞培养 | 第49-50页 |
| 4.4.2 HUVEC细胞生长曲线 | 第50页 |
| 4.4.3 Fucoidan对HUVEC细胞增殖活性影响实验 | 第50-53页 |
| 4.4.4 Adr造模浓度的确定 | 第53-55页 |
| 4.4.5 Fucoidan对受Adr损伤的HUVEC细胞增殖影响 | 第55-56页 |
| 4.4.6 Fucoidan活性实验 | 第56-64页 |
| 4.5 讨论 | 第64-65页 |
| 4.6 小结 | 第65-67页 |
| 5 总结论 | 第67-69页 |
| 5.1 本文的主要结论 | 第67-68页 |
| 5.2 创新点 | 第68页 |
| 5.3 本文存在的问题及展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 作者简介 | 第78-79页 |
| 导师简介 | 第79页 |
