牛乳酪蛋白抗氧化肽的分离纯化
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-23页 |
·研究目的与意义 | 第11-12页 |
·牛乳的营养价值及生物活性功能 | 第12-13页 |
·牛乳的营养价值 | 第12页 |
·牛乳的生物活性功能 | 第12-13页 |
·乳源生物活性肽的种类及其功能 | 第13-14页 |
·乳本身生物活性肽 | 第13-14页 |
·乳蛋白源生物活性肽 | 第14页 |
·制备抗氧化肽的原料及方法 | 第14-16页 |
·制备抗氧化肽的原料 | 第15页 |
·动物性原料 | 第15页 |
·植物性原料 | 第15页 |
·制备抗氧化肽的方法 | 第15-16页 |
·乳源抗氧化活性肽研究进展 | 第16-22页 |
·乳源抗氧化肽的分离与纯化 | 第16-17页 |
·超滤 | 第16-17页 |
·凝胶过滤法 | 第17页 |
·离子交换层析法 | 第17页 |
·反相液相色谱法 | 第17页 |
·抗氧化活性的研究方法 | 第17-19页 |
·脂质过氧化检测方法 | 第18页 |
·清除自由基能力的检测方法 | 第18-19页 |
·体内抗氧化实验 | 第19页 |
·乳源肽的抗氧化机理及构效关系 | 第19-21页 |
·酶解过程对酶解物抗氧化活性的影响 | 第19-20页 |
·分子量与抗氧化活性 | 第20页 |
·氨基酸种类、序列与抗氧化活性 | 第20-21页 |
·乳源抗氧化肽在食品中的应用 | 第21-22页 |
·研究主要内容 | 第22-23页 |
第二章 牛乳酪蛋白抗氧化肽的酶解工艺 | 第23-37页 |
·前言 | 第23页 |
·实验材料和设备 | 第23-24页 |
·实验材料 | 第23页 |
·主要试剂 | 第23-24页 |
·主要仪器 | 第24页 |
·实验方法 | 第24-29页 |
·蛋白酶活力测定 | 第24-25页 |
·酪蛋白的酶解工艺 | 第25-26页 |
·酶解条件的正交试验 | 第26页 |
·多肽浓度的测定 | 第26页 |
·抗氧化活性的测定 | 第26-29页 |
·DPPH·清除率的测定 | 第26-27页 |
·邻苯三酚自氧化法测抗氧化性 | 第27-28页 |
·邻二氮菲法测抗氧化性 | 第28-29页 |
·结果与讨论 | 第29-36页 |
·酶活力测定 | 第29页 |
·酪氨酸标准曲线 | 第29页 |
·酶活力测定的结果 | 第29页 |
·Folin-酚法测蛋白的标准曲线 | 第29-30页 |
·加酶量对抗氧化活性的影响 | 第30-31页 |
·pH值对抗氧化活性的影响 | 第31页 |
·水解温度对抗氧化活性的影响 | 第31-32页 |
·水解时间对抗氧化活性的影响 | 第32-33页 |
·正交试验确定酶解最佳条件 | 第33-34页 |
·最佳酶解条件下的清除率 | 第34-35页 |
·多肽浓度对酪蛋白酶解物抗氧化性的影响 | 第35-36页 |
·本章小结 | 第36-37页 |
第三章 酪蛋白抗氧化肽的分离纯化 | 第37-54页 |
·前言 | 第37-38页 |
·实验材料和设备 | 第38-39页 |
·实验材料 | 第38页 |
·主要试剂 | 第38页 |
·主要仪器 | 第38-39页 |
·实验方法 | 第39-41页 |
·超滤 | 第39页 |
·Sephadex G-25凝胶层析 | 第39-40页 |
·DEAE-52离子交换层析 | 第40页 |
·RP-HPLC分离纯化 | 第40-41页 |
·RP-HPLC制备 | 第41页 |
·DPPH·清除率测定 | 第41页 |
·结果与讨论 | 第41-52页 |
·超滤液的DPPH·清除率 | 第41-43页 |
·凝胶分离结果 | 第43-46页 |
·不同凝胶的分离结果 | 第43页 |
·不同洗脱液的分离结果 | 第43-44页 |
·不同上样量的分离结果 | 第44-45页 |
·不同流速的分离结果 | 第45-46页 |
·DEAE-52离子交换层析分离结果 | 第46-47页 |
·RP-HPLC的分离纯化 | 第47-50页 |
·洗脱液的选择 | 第47-48页 |
·检测波长的选择 | 第48-49页 |
·洗脱条件的选择 | 第49-50页 |
·RP-HPLC制备 | 第50-52页 |
·分析型RP-HPLC分离色谱峰5 | 第52页 |
·本章小结 | 第52-54页 |
第四章 结论与展望 | 第54-56页 |
·主要结论 | 第54页 |
·问题与展望 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
附录 | 第62页 |