| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-23页 |
| 1.1 裙带菜概述 | 第13-14页 |
| 1.1.1 裙带菜简介 | 第13页 |
| 1.1.2 裙带菜的化学组成 | 第13-14页 |
| 1.2 裙带菜多糖的研究现状 | 第14-17页 |
| 1.2.1 裙带菜多糖的抗肿瘤活性 | 第14-15页 |
| 1.2.2 裙带菜多糖的抗病毒活性 | 第15页 |
| 1.2.3 裙带菜多糖的抗炎和抗过敏活性 | 第15-16页 |
| 1.2.4 裙带菜多糖的免疫调节活性 | 第16页 |
| 1.2.5 裙带菜多糖的抗氧化活性 | 第16-17页 |
| 1.2.6 裙带菜多糖的其它生物活性 | 第17页 |
| 1.3 活性多糖的研究方法 | 第17-20页 |
| 1.3.1 多糖提取方法 | 第17-18页 |
| 1.3.2 多糖的分离纯化方法 | 第18-19页 |
| 1.3.3 多糖的化学组成与结构解析方法 | 第19-20页 |
| 1.4 多糖与免疫 | 第20页 |
| 1.5 本课题的研究意义及主要内容 | 第20-23页 |
| 1.5.1 立题背景及意义 | 第20-21页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第21-22页 |
| 1.5.3 主要技术路线 | 第22-23页 |
| 第二章 裙带菜多糖的制备及其结构和生物活性研究 | 第23-41页 |
| 2.1 前言 | 第23页 |
| 2.2 实验试剂与设备 | 第23-26页 |
| 2.2.1 原料 | 第23页 |
| 2.2.2 试剂与材料 | 第23-25页 |
| 2.2.3 仪器与设备 | 第25-26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-31页 |
| 2.3.1 裙带菜多糖的制备 | 第26页 |
| 2.3.2 裙带菜多糖的化学组成测定 | 第26-28页 |
| 2.3.3 裙带菜多糖的紫外光谱扫描 | 第28页 |
| 2.3.4 裙带菜多糖的分子量测定 | 第28页 |
| 2.3.5 裙带菜多糖的结构测定 | 第28-30页 |
| 2.3.6 裙带菜多糖的生物活性研究 | 第30-31页 |
| 2.4 数据分析 | 第31页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第31-40页 |
| 2.5.1 裙带菜多糖的基本化学组成 | 第31-32页 |
| 2.5.2 裙带菜多糖的紫外扫描分析 | 第32页 |
| 2.5.3 裙带菜多糖的分子量分布 | 第32-33页 |
| 2.5.4 裙带菜多糖的红外光谱分析 | 第33页 |
| 2.5.5 裙带菜多糖的单糖组成 | 第33-36页 |
| 2.5.6 裙带菜多糖的糖苷键连接方式分析 | 第36-37页 |
| 2.5.7 裙带菜多糖的生物活性 | 第37-40页 |
| 2.6 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 裙带菜多糖的分离纯化与抗氧化活性研究 | 第41-53页 |
| 3.1 前言 | 第41页 |
| 3.2 实验试剂与设备 | 第41-43页 |
| 3.2.1 试剂与材料 | 第41-42页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第42-43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-44页 |
| 3.3.1 裙带菜多糖的分离纯化 | 第43页 |
| 3.3.2 各多糖组分化学组成分析 | 第43页 |
| 3.3.3 各多糖组分的分子量测定 | 第43页 |
| 3.3.4 各多糖组分的氧自由基吸收能力测定 | 第43-44页 |
| 3.3.5 各多糖组分的ABTS自由基清除能力测定 | 第44页 |
| 3.3.6 各多糖组分的DPPH自由基清除能力测定 | 第44页 |
| 3.4 数据分析 | 第44-45页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第45-52页 |
| 3.5.1 裙带菜多糖的柱层析分离 | 第45-46页 |
| 3.5.2 各多糖组分的化学组成 | 第46页 |
| 3.5.3 各多糖组分的紫外扫描分析 | 第46-47页 |
| 3.5.4 各多糖组分的分子量分布 | 第47-48页 |
| 3.5.5 各多糖组分的氧自由基吸收能力 | 第48-49页 |
| 3.5.6 各多糖组分的ABTS自由基清除能力 | 第49-50页 |
| 3.5.7 各多糖组分的DPPH自由基清除能力 | 第50-52页 |
| 3.6 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 裙带菜酸性多糖对RAW264.7巨噬细胞的免疫调节作用研究 | 第53-69页 |
| 4.1 前言 | 第53页 |
| 4.2 实验试剂与设备 | 第53-55页 |
| 4.2.1 试剂与材料 | 第53-54页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第54-55页 |
| 4.3 实验方法 | 第55-58页 |
| 4.3.1 裙带菜多糖内毒素检测 | 第55页 |
| 4.3.2 RAW264.7细胞的培养与传代 | 第55-56页 |
| 4.3.3 裙带菜多糖对RAW264.7细胞的毒性实验 | 第56页 |
| 4.3.4 RAW264.7细胞吞噬能力的测定 | 第56页 |
| 4.3.5 裙带菜免疫活性多糖的筛选 | 第56页 |
| 4.3.6 活性多糖的RT-QPCR实验 | 第56-58页 |
| 4.3.7 细胞因子释放量的测定 | 第58页 |
| 4.4 数据分析 | 第58页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第58-68页 |
| 4.5.1 裙带菜多糖内毒素检测结果 | 第58-59页 |
| 4.5.2 裙带菜多糖对RAW264.7细胞的生长的影响 | 第59页 |
| 4.5.3 裙带菜多糖对RAW264.7细胞吞噬作用的影响 | 第59-60页 |
| 4.5.4 裙带菜多糖对RAW264.7细胞NO释放量的影响(活性多糖筛选) | 第60-61页 |
| 4.5.5 裙带菜粗多糖对RAW264.7细胞iNOSmRNA表达的影响 | 第61-62页 |
| 4.5.6 活性多糖对RAW264.7细胞的iNOS和细胞因子mRNA表达的影响 | 第62-65页 |
| 4.5.7 活性多糖对RAW264.7细胞的细胞因子释放的影响 | 第65-68页 |
| 4.6 本章小结 | 第68-69页 |
| 第五章 裙带菜免疫活性多糖的结构表征 | 第69-87页 |
| 5.1 前言 | 第69页 |
| 5.2 实验试剂与设备 | 第69-71页 |
| 5.2.1 试剂与材料 | 第69-70页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第70-71页 |
| 5.3 实验方法 | 第71-72页 |
| 5.3.1 红外光谱扫描分析 | 第71页 |
| 5.3.2 三股螺旋构象的测定 | 第71页 |
| 5.3.3 单糖组成的测定 | 第71页 |
| 5.3.4 高碘酸氧化与Smith降解 | 第71页 |
| 5.3.5 活性多糖的甲基化分析 | 第71-72页 |
| 5.3.6 活性多糖的核磁共振分析 | 第72页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第72-85页 |
| 5.4.1 红外光谱扫描分析 | 第72-73页 |
| 5.4.2 各多糖组分的构象分析 | 第73-74页 |
| 5.4.3 各多糖组分的单糖组成分析 | 第74-76页 |
| 5.4.4 各多糖组分的高碘酸氧化与Smith降解分析 | 第76-78页 |
| 5.4.5 活性多糖的糖苷键连接方式 | 第78-79页 |
| 5.4.6 活性多糖的核磁共振分析 | 第79-84页 |
| 5.4.7 活性多糖的构效关系分析 | 第84-85页 |
| 5.5 本章小结 | 第85-87页 |
| 结论与展望 | 第87-89页 |
| 1.结论 | 第87-88页 |
| 2.创新点 | 第88页 |
| 3.展望 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-101页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 附录 | 第103页 |
