| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 文献综述 | 第14-26页 |
| 1.1 黑果枸杞概述 | 第14-19页 |
| 1.1.1 黑果枸杞分布情况 | 第14页 |
| 1.1.2 黑果枸杞化学成分研究进展 | 第14-19页 |
| 1.1.2.1 黄酮类 | 第14-16页 |
| 1.1.2.2 花色苷类 | 第16-17页 |
| 1.1.2.3 多糖类 | 第17-18页 |
| 1.1.2.4 其他类 | 第18-19页 |
| 1.2 黑果枸杞开发利用研究现状 | 第19页 |
| 1.3 超声波及其在植物提取中的应用 | 第19-20页 |
| 1.3.1 超声提取原理 | 第19-20页 |
| 1.3.2 超声提取技术的特点 | 第20页 |
| 1.3.3 超声波在植物提取中的应用 | 第20页 |
| 1.4 果粉干燥技术 | 第20-22页 |
| 1.5 存在问题及生产黑果枸杞速溶粉的意义 | 第22-23页 |
| 1.5.1 存在问题 | 第22页 |
| 1.5.2 生产黑果枸杞速溶粉的意义 | 第22-23页 |
| 1.6 本课题的研究目的及内容 | 第23-26页 |
| 1.6.1 研究目的 | 第23页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第23-26页 |
| 2 超声辅助提取工艺优化 | 第26-34页 |
| 2.1 引言 | 第26页 |
| 2.2 材料与设备 | 第26-28页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.2.2 主要耗材及仪器 | 第27-28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.3.1 花色苷测定方法 | 第28页 |
| 2.3.2 超声辅助提取 | 第28-29页 |
| 2.3.2.1 单因素试验 | 第28页 |
| 2.3.2.2 正交试验 | 第28-29页 |
| 2.4 超声提取法与常规提取法效果比较 | 第29页 |
| 2.5 结果与分析 | 第29-31页 |
| 2.5.1 单因素试验结果分析 | 第29-30页 |
| 2.5.2 正交试验 | 第30-31页 |
| 2.6 超声提取法与常规提取法效果比较 | 第31-32页 |
| 2.7 本章小结 | 第32-34页 |
| 3 干燥工艺比较与优化 | 第34-44页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 材料与设备 | 第34-35页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.2.2 主要耗材及仪器 | 第34-35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.3.1 热风干燥实验 | 第35页 |
| 3.3.2 超声干燥实验 | 第35页 |
| 3.3.3 冷冻干燥实验 | 第35页 |
| 3.3.4 喷雾干燥实验 | 第35页 |
| 3.3.5 喷雾干燥响应面试验设计 | 第35-36页 |
| 3.3.6 黑果枸杞速溶粉得粉率 | 第36页 |
| 3.3.7 黑果枸杞速溶粉水分含量的测定 | 第36页 |
| 3.3.8 黑果枸杞速溶粉体积密度的测定 | 第36-37页 |
| 3.3.9 黑果枸杞速溶粉花色苷含量测定 | 第37页 |
| 3.4 结果与分析 | 第37-42页 |
| 3.4.1 干燥方式比较 | 第37-38页 |
| 3.4.2 喷雾干燥工艺优化 | 第38-42页 |
| 3.5 本章小结 | 第42-44页 |
| 4 黑果枸杞速溶粉主要成分检测与品质评价 | 第44-58页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 材料与设备 | 第44-45页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第44页 |
| 4.2.2 主要耗材及仪器 | 第44-45页 |
| 4.3 实验方法 | 第45-49页 |
| 4.3.1 速溶粉微观结构表征 | 第45页 |
| 4.3.1.1 扫描电镜 | 第45页 |
| 4.3.1.2 粒径分布 | 第45页 |
| 4.3.2 速溶粉冲调性 | 第45-46页 |
| 4.3.2.1 速溶粉与干果冲泡效果比较 | 第45页 |
| 4.3.2.2 速溶粉溶解时间 | 第45-46页 |
| 4.3.3 速溶粉感官评价 | 第46页 |
| 4.3.4 速溶粉营养成分测定 | 第46-47页 |
| 4.3.5 黑果枸杞速溶粉体外抗氧化实验 | 第47-49页 |
| 4.3.5.1 ABTS~(+·)自由基清除能力 | 第47-48页 |
| 4.3.5.2 DPPH法 | 第48页 |
| 4.3.5.3 还原力的测定 | 第48页 |
| 4.3.5.4 半抑制浓度(IC_(50))的计算 | 第48-49页 |
| 4.4 结果与分析 | 第49-56页 |
| 4.4.1 黑果枸杞速溶粉微观结构表征 | 第49页 |
| 4.4.2 速溶粉冲调性 | 第49-50页 |
| 4.4.2.1 速溶粉与干果冲泡效果比较 | 第49-50页 |
| 4.4.2.2 黑果枸杞速溶粉溶解时间 | 第50页 |
| 4.4.3 速溶粉感官评价 | 第50-51页 |
| 4.4.4 速溶粉营养成分测定 | 第51-54页 |
| 4.4.4.1 标准曲线 | 第51-52页 |
| 4.4.4.2 黑果枸杞速溶粉营养成分 | 第52-54页 |
| 4.4.5 黑果枸杞速溶粉体外抗氧化实验 | 第54-56页 |
| 4.5 本章小结 | 第56-58页 |
| 5 黑果枸杞花色苷分离纯化 | 第58-70页 |
| 5.1 引言 | 第58-59页 |
| 5.2 材料与设备 | 第59页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第59页 |
| 5.2.2 主要耗材及仪器 | 第59页 |
| 5.3 实验方法 | 第59-62页 |
| 5.3.1 花色苷检测方法 | 第59-60页 |
| 5.3.2 乙酸乙酯萃取 | 第60页 |
| 5.3.3 大孔树脂纯化 | 第60-62页 |
| 5.3.3.1 大孔树脂处理与再生 | 第60页 |
| 5.3.3.2 不同树脂对花色苷的吸附和解吸性能 | 第60-61页 |
| 5.3.3.3 泄漏曲线 | 第61页 |
| 5.3.3.4 动态洗脱曲线 | 第61-62页 |
| 5.3.4 葡聚糖凝胶纯化 | 第62页 |
| 5.3.4.1 凝胶与样品预处理 | 第62页 |
| 5.3.4.2 加样与洗脱 | 第62页 |
| 5.3.5 半制备液相花色苷单体制备 | 第62页 |
| 5.4 结果与分析 | 第62-68页 |
| 5.4.1 乙酸乙酯萃取 | 第62-63页 |
| 5.4.2 大孔树脂纯化 | 第63-65页 |
| 5.4.2.1 不同树脂对黑果枸杞花色苷的吸附和解吸性能 | 第63页 |
| 5.4.2.2 泄漏曲线 | 第63-64页 |
| 5.4.2.3 动态洗脱曲线 | 第64-65页 |
| 5.4.3 葡聚糖凝胶纯化 | 第65-66页 |
| 5.4.4 半制备液相花色苷单体制备 | 第66-68页 |
| 5.5 本章小结 | 第68-70页 |
| 6 黑果枸杞提取物对小鼠的睡眠影响实验 | 第70-78页 |
| 6.1 引言 | 第70页 |
| 6.2 材料与试剂 | 第70页 |
| 6.3 实验方法 | 第70-72页 |
| 6.3.1 剂量设置 | 第70-71页 |
| 6.3.2 测定指标和方法 | 第71-72页 |
| 6.3.2.1 直接睡眠实验 | 第71页 |
| 6.3.2.2 延长戊巴比妥钠睡眠时间实验 | 第71页 |
| 6.3.2.3 对巴比妥钠睡眠潜伏期的影响实验 | 第71页 |
| 6.3.2.4 对小鼠自主活动的影响实验 | 第71-72页 |
| 6.3.2.5 对小鼠血清SOD、丙二醛和皮质醇水平的影响 | 第72页 |
| 6.4 结果与分析 | 第72-76页 |
| 6.4.1 对小鼠一般状态的影响 | 第72-73页 |
| 6.4.2 对小鼠睡眠状态的影响 | 第73页 |
| 6.4.3 对戊巴比妥钠诱导睡眠时间的影响 | 第73页 |
| 6.4.4 对巴比妥钠睡眠潜伏期的影响 | 第73-74页 |
| 6.4.5 对小鼠自主活动的影响 | 第74页 |
| 6.4.6 对小鼠血清SOD、MDA和皮质醇水平的影响 | 第74-76页 |
| 6.5 本章小结 | 第76-78页 |
| 7 结论与展望 | 第78-80页 |
| 7.1 结论 | 第78-79页 |
| 7.2 主要创新点 | 第79页 |
| 7.3 展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-88页 |
| 附录 | 第88-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第96页 |
