| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-36页 |
| ·扇贝概述 | 第17-18页 |
| ·扇贝低值副产物综合利用研究进展 | 第18-23页 |
| ·扇贝生殖腺的开发利用 | 第18-20页 |
| ·扇贝裙边的开发利用 | 第20-21页 |
| ·扇贝中肠腺的开发利用 | 第21页 |
| ·扇贝内脏团的开发利用 | 第21-22页 |
| ·扇贝壳的开发利用 | 第22-23页 |
| ·水产动物源活性肽及水解物的研究进展 | 第23-31页 |
| ·水产动物活性肽及蛋白水解物的制备方式 | 第23-24页 |
| ·水产动物源蛋白水解物的理化功能特性研究进展 | 第24-27页 |
| ·水产动物蛋白源抗氧化肽研究进展 | 第27-31页 |
| ·多肽美拉德反应特性的研究进展 | 第31-33页 |
| ·制备方式及原理 | 第31-32页 |
| ·多肽美拉德反应特性的研究现状 | 第32-33页 |
| ·多肽-钙螯合物的研究进展 | 第33-34页 |
| ·制备方式 | 第33页 |
| ·多肽-钙螯合物的研究现状 | 第33-34页 |
| ·课题的立题依据与研究内容 | 第34-36页 |
| ·立题依据 | 第34-35页 |
| ·研究内容 | 第35-36页 |
| 第二章 虾夷扇贝生殖腺水解物的制备及特性的初步研究 | 第36-46页 |
| ·引言 | 第36页 |
| ·材料与方法 | 第36-37页 |
| ·材料与试剂 | 第36-37页 |
| ·仪器与设备 | 第37页 |
| ·试验方法 | 第37-41页 |
| ·虾夷扇贝生殖腺主要化学成分的测定 | 第37-39页 |
| ·试验步骤及工艺流程 | 第39-40页 |
| ·水解度测定 | 第40页 |
| ·肽得率以及 TCA 可溶性寡肽和可溶性蛋白含量测定 | 第40页 |
| ·Sephadex G-25 凝胶层析分离及还原能力测定 | 第40-41页 |
| ·分子量分布测定 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-45页 |
| ·虾夷扇贝生殖腺的化学组成 | 第41-42页 |
| ·SFG 和 SMG 水解过程中的水解度曲线 | 第42-43页 |
| ·虾夷扇贝生殖腺水解液中 TCA 可溶性寡肽浓度及肽得率 | 第43-44页 |
| ·雌性虾夷扇贝生殖腺水解液的 Sephadex G-25 凝胶分离及还原力 | 第44页 |
| ·经变性处理后雌性虾夷扇贝生殖腺水解液的分子量分布 | 第44-45页 |
| ·小结 | 第45-46页 |
| 第三章 虾夷扇贝生殖腺凝胶状水解物的理化特性研究 | 第46-57页 |
| ·引言 | 第46页 |
| ·材料与方法 | 第46-47页 |
| ·材料与试剂 | 第46-47页 |
| ·仪器与设备 | 第47页 |
| ·试验方法 | 第47-49页 |
| ·不同水解度虾夷扇贝雄性生殖腺水解物的制备 | 第47页 |
| ·热诱导凝胶性测定 | 第47页 |
| ·溶解性测定 | 第47-48页 |
| ·持水/油性测定 | 第48页 |
| ·乳化性测定 | 第48页 |
| ·泡沫性测定 | 第48页 |
| ·表面疏水性测定 | 第48-49页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第49页 |
| ·结果与分析 | 第49-55页 |
| ·SMGHs 水解度及状态 | 第49-51页 |
| ·SMGHs 的热诱导凝胶性 | 第51页 |
| ·SMGHs 的溶解性 | 第51-52页 |
| ·SMGHs 的持水/油性 | 第52-53页 |
| ·SMGHs 的乳化性 | 第53-54页 |
| ·SMGHs 的泡沫性 | 第54页 |
| ·SMGHs 的表面疏水性 | 第54-55页 |
| ·SMGHs 的氨基酸组成 | 第55页 |
| ·小结 | 第55-57页 |
| 第四章 虾夷扇贝生殖腺凝胶状水解物分子间作用力的研究 | 第57-66页 |
| ·引言 | 第57-58页 |
| ·材料与方法 | 第58页 |
| ·材料与试剂 | 第58页 |
| ·仪器与设备 | 第58页 |
| ·试验方法 | 第58-59页 |
| ·SMGHs 的制备 | 第58页 |
| ·水解度的测定 | 第58页 |
| ·分子量分布的测定 | 第58页 |
| ·扫描电镜 | 第58-59页 |
| ·SMGHs 凝胶性质的测定 | 第59页 |
| ·结果与分析 | 第59-65页 |
| ·SMGHs 的水解度和分子量分布 | 第59-60页 |
| ·SMGHs 的微观结构及凝胶性质 | 第60-61页 |
| ·几种化学试剂对 SMGHs 非共价键的影响 | 第61-63页 |
| ·几种盐对 SMGHs 凝胶性质的影响 | 第63-64页 |
| ·几种化学试剂对 SMGHs 共价键的影响 | 第64-65页 |
| ·小结 | 第65-66页 |
| 第五章 虾夷扇贝生殖腺水解物中多肽的分离纯化及活性研究 | 第66-77页 |
| ·引言 | 第66-67页 |
| ·材料与方法 | 第67页 |
| ·材料与试剂 | 第67页 |
| ·仪器与设备 | 第67页 |
| ·试验方法 | 第67-69页 |
| ·虾夷扇贝雌性生殖腺水解物的制备 | 第67-68页 |
| ·抗氧化活性评价 | 第68页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第68页 |
| ·Sephadex G-25 凝胶过滤层析分离 | 第68-69页 |
| ·目标组分的序列鉴定 | 第69页 |
| ·目标肽的人工合成 | 第69页 |
| ·合成肽的抗氧化活性评价 | 第69页 |
| ·结果与分析 | 第69-76页 |
| ·SFGHs 的抗氧化活性 | 第69-71页 |
| ·虾夷扇贝雌性生殖腺及水解物的氨基酸组成 | 第71-72页 |
| ·Sephadex G-25 分离效果及活性组分筛选 | 第72页 |
| ·组分 F4 中寡肽的鉴定 | 第72-73页 |
| ·P1 和 P2 的人工合成及 DPPH 自由基清除能力 | 第73-75页 |
| ·P1 和 P2 对羟基自由基诱导的 DNA 氧化损伤的保护能力 | 第75-76页 |
| ·小结 | 第76-77页 |
| 第六章 虾夷扇贝生殖腺水解物美拉德反应特性及活性研究 | 第77-88页 |
| ·引言 | 第77页 |
| ·材料与方法 | 第77-78页 |
| ·材料与试剂 | 第77-78页 |
| ·仪器与设备 | 第78页 |
| ·试验方法 | 第78-80页 |
| ·虾夷扇贝雌性生殖腺水解物的制备 | 第78页 |
| ·SFGHs 美拉德反应条件 | 第78-79页 |
| ·SFGHs 美拉德反应过程中各种指标的检测 | 第79页 |
| ·SFGHs 美拉德反应产物抗氧化活性评价 | 第79-80页 |
| ·结果与分析 | 第80-87页 |
| ·反应条件对 SFGHs 美拉德反应的影响 | 第80-83页 |
| ·SFGHs 与核糖美拉德反应过程中各种指标的动态变化 | 第83-86页 |
| ·SFGHs 与核糖美拉德反应过程中各指标的相关性分析 | 第86-87页 |
| ·小结 | 第87-88页 |
| 第七章 虾夷扇贝生殖腺多肽-CA~(2+)螯合物的研究 | 第88-100页 |
| ·引言 | 第88页 |
| ·材料与方法 | 第88-89页 |
| ·材料与试剂 | 第88页 |
| ·仪器与设备 | 第88-89页 |
| ·试验方法 | 第89-90页 |
| ·虾夷扇贝雌性生殖腺水解物的制备 | 第89页 |
| ·多肽- Ca~(2+)螯合反应 | 第89页 |
| ·单因素试验 | 第89页 |
| ·响应面试验设计 | 第89页 |
| ·多肽与 Ca~(2+)螯合前后氮和钙质量分数测定 | 第89-90页 |
| ·多肽与 Ca~(2+)螯合前后红外光谱 | 第90页 |
| ·多肽-Ca~(2+)螯合物的体外模拟消化 | 第90页 |
| ·数据处理及统计方法 | 第90页 |
| ·结果与分析 | 第90-99页 |
| ·单因素试验结果 | 第90-93页 |
| ·响应面回归模型的建立及方差分析 | 第93-94页 |
| ·响应面分析 | 第94-95页 |
| ·响应面优化结果及验证 | 第95-97页 |
| ·多肽-Ca~(2+)螯合前后氮和钙质量分数 | 第97页 |
| ·多肽与 Ca~(2+)螯合前后红外光谱特征 | 第97-98页 |
| ·多肽与 Ca~(2+)螯合物经体外消化后的钙透析率 | 第98-99页 |
| ·小结 | 第99-100页 |
| 第八章 结论、创新点以及展望 | 第100-105页 |
| ·结论 | 第100-102页 |
| ·创新点 | 第102页 |
| ·展望 | 第102-105页 |
| 参考文献 | 第105-119页 |
| 主要缩略词及中英文对照表 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
| 作者简介 | 第121-122页 |
