| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第一章 绪论 | 第15-49页 |
| 1.1 乳酸菌 | 第15页 |
| 1.1.1 乳酸菌定义及分类 | 第15页 |
| 1.2 乳酸菌应用 | 第15-19页 |
| 1.2.1 发酵乳制品 | 第16-17页 |
| 1.2.2 发酵蔬菜 | 第17页 |
| 1.2.3 发酵肉制品 | 第17-18页 |
| 1.2.4 微生态制剂 | 第18-19页 |
| 1.3 乳酸菌功能 | 第19-27页 |
| 1.3.1 抑制病原菌功能 | 第19-21页 |
| 1.3.2 抗氧化功能 | 第21-23页 |
| 1.3.3 免疫调节功能 | 第23-25页 |
| 1.3.4 降胆固醇功能 | 第25-27页 |
| 1.4 氧化损伤 | 第27-33页 |
| 1.4.1 自由基 | 第27-28页 |
| 1.4.2 氧化损伤 | 第28-29页 |
| 1.4.3 内源性抗氧化防御系统 | 第29-31页 |
| 1.4.4 外源性抗氧化剂 | 第31-32页 |
| 1.4.5 乳酸菌抗氧化功能及修复氧化损伤的研究方法 | 第32-33页 |
| 1.5 论文的立题依据、研究目的与意义 | 第33页 |
| 1.6 论文研究内容与技术路线 | 第33-35页 |
| 参考文献 | 第35-49页 |
| 第二章 具有优良抗氧化能力乳酸菌的体外筛选与鉴定 | 第49-72页 |
| 2.1 前言 | 第49页 |
| 2.2 材料 | 第49-51页 |
| 2.2.1 传统发酵食品样品 | 第49页 |
| 2.2.2 培养基 | 第49-50页 |
| 2.2.3 其他试剂及试剂盒 | 第50页 |
| 2.2.4 主要设备及其来源 | 第50-51页 |
| 2.3 实验方法 | 第51-54页 |
| 2.3.1 乳酸菌的分离 | 第51页 |
| 2.3.2 乳酸菌无菌生理盐水菌悬液制备 | 第51页 |
| 2.3.3 乳酸菌的体外抗氧化活性的测定 | 第51-53页 |
| 2.3.4 相关性分析 | 第53页 |
| 2.3.5 乳酸菌的形态特征和生理生化特性测定 | 第53页 |
| 2.3.6 乳酸菌的系统发育分析 | 第53-54页 |
| 2.3.7 数据分析 | 第54页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第54-68页 |
| 2.4.1 菌株的分离 | 第54-56页 |
| 2.4.2 分离菌株的DPPP自由基清除能力 | 第56-58页 |
| 2.4.3 分离菌株的还原活性测定 | 第58-59页 |
| 2.4.4 分离菌株的羟自由基清除能力 | 第59-60页 |
| 2.4.5 分离菌株的抗脂质过氧化能力 | 第60-62页 |
| 2.4.6 分离菌株的还原活性与DPPH自由基清除力、羟自由基清除能力和抗脂质过氧化能力的相关性性分析 | 第62-63页 |
| 2.4.7 菌株的鉴定 | 第63-68页 |
| 2.5 本章小结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-72页 |
| 第三章 M9-1、LP-4和P13菌株的益生特性和应用基础研究 | 第72-91页 |
| 3.1 前言 | 第72页 |
| 3.2 材料 | 第72-73页 |
| 3.2.1 菌株资源 | 第72页 |
| 3.2.2 培养基 | 第72-73页 |
| 3.2.3 主要试剂 | 第73页 |
| 3.2.4 主要设备及其来源 | 第73页 |
| 3.3 实验方法 | 第73-77页 |
| 3.3.1 菌株M9-1、LP-4和P13的耐酸能力测定 | 第73页 |
| 3.3.2 菌株M9-1、LP-4和P13的耐肠液能力测定 | 第73-74页 |
| 3.3.3 菌株M9-1、LP-4和P13的耐过氧化氢能力测定 | 第74页 |
| 3.3.4 菌株M9-1、LP-4和P13的耐盐性能测定 | 第74页 |
| 3.3.5 菌株M9-1、LP-4和P13的溶血特性测定 | 第74页 |
| 3.3.6 菌株M9-1、LP-4和P13的抑菌特性 | 第74-75页 |
| 3.3.7 菌株M9-1、LP-4和P13的产生物胺能力测定 | 第75页 |
| 3.3.8 菌株M9-1、LP-4和P13的降胆固醇能力测定 | 第75页 |
| 3.3.9 菌株M9-1、LP-4和P13的自凝集能力测定 | 第75-76页 |
| 3.3.10 菌株M9-1、LP-4和P13的交互集能力测定 | 第76页 |
| 3.3.11 菌株M9-1、LP-4和P13的表面疏水性测定 | 第76页 |
| 3.3.12 菌株M9-1、LP-4和P13的对细胞Caco-2粘附能力测定 | 第76-77页 |
| 3.3.13 数据分析 | 第77页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第77-86页 |
| 3.4.1 菌株M9-1、LP-4和P13的耐酸性能 | 第77-78页 |
| 3.4.2 菌株M9-1、LP-4和P13的耐肠液性能 | 第78-79页 |
| 3.4.3 菌株M9-1、LP-4和P13的耐过氧化氢能力 | 第79-80页 |
| 3.4.4 菌株M9-1、LP-4和P13的耐渗透压能力 | 第80-81页 |
| 3.4.5 菌株M9-1、LP-4和P13的溶血特性 | 第81页 |
| 3.4.6 菌株M9-1、LP-4和P13的抑菌特性 | 第81-82页 |
| 3.4.7 菌株M9-1、LP-4和P13的产生物胺能力 | 第82页 |
| 3.4.8 菌株M9-1、LP-4和P13的降胆固醇能力 | 第82-83页 |
| 3.4.9 菌株M9-1、LP-4和P13的自凝集能力 | 第83-84页 |
| 3.4.10 菌株M9-1、LP-4和P13的交互集能力 | 第84-85页 |
| 3.4.11 菌株M9-1、LP-4和P13的表面疏水性测定 | 第85页 |
| 3.4.12 菌株M9-1、LP-4和P13对细胞Caco-2粘附能力测定 | 第85-86页 |
| 3.5 本章小结 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-91页 |
| 第四章 M9-1和LP-4对D-半乳糖诱导氧化损伤小鼠的修复机制 | 第91-117页 |
| 4.1 前言 | 第91页 |
| 4.2 材料 | 第91-93页 |
| 4.2.1 菌株资源 | 第91-92页 |
| 4.2.2 培养基 | 第92页 |
| 4.2.3 主要试剂 | 第92页 |
| 4.2.4 主要设备及其来源 | 第92页 |
| 4.2.5 试验动物与饲料 | 第92-93页 |
| 4.3 实验方法 | 第93-98页 |
| 4.3.1 准备小鼠 | 第93页 |
| 4.3.2 菌株M9-1和LP-4的培养及菌体处理 | 第93页 |
| 4.3.3 小鼠分组处理设计 | 第93-94页 |
| 4.3.4 小鼠血浆、肝组织和肾组织样品的处理 | 第94-95页 |
| 4.3.5 小鼠氧化应激标志物的检测与分析 | 第95-96页 |
| 4.3.6 RT-qPCR法检测SOD、GSH-Px、NRF2和TRX基因的相对表达水平 | 第96-98页 |
| 4.3.7 组织HE染色及观察 | 第98页 |
| 4.3.8 数据分析 | 第98页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第98-112页 |
| 4.4.1 不同实验处理对氧化损伤小鼠血浆、肝脏和肾组织中GSH-Px的影响 | 第98-100页 |
| 4.4.2 不同实验处理对氧化损伤小鼠血浆、肝脏和肾组织中SOD的影响 | 第100-101页 |
| 4.4.3 不同实验处理对氧化损伤小鼠血浆、肝脏和肾组织中蛋白质羰基的影响 | 第101-102页 |
| 4.4.4 不同实验处理对氧化损伤小鼠血浆、肝脏和肾组织中丙二醛的影响 | 第102-103页 |
| 4.4.5 不同实验处理对氧化损伤小鼠血清内毒素的影响 | 第103-104页 |
| 4.4.6 不同实验处理对氧化损伤小鼠肝脏和肾组织中SOD相对表达量的影响 | 第104-106页 |
| 4.4.7 不同实验处理对氧化损伤小鼠肝脏和肾组织中GSH-Px相对表达量的影响 | 第106-107页 |
| 4.4.8 不同实验处理对氧化损伤小鼠肝脏和肾组织中NRF2相对表达量的影响 | 第107-109页 |
| 4.4.9 不同实验处理对氧化损伤小鼠肝脏和肾组织中TRX相对表达量的影响 | 第109-110页 |
| 4.4.10 不同实验处理对小鼠肝脏和肾组织形态学的影响 | 第110-112页 |
| 4.5 本章小结 | 第112-113页 |
| 参考文献 | 第113-117页 |
| 第五章 LP-4菌株的高密度培养条件优化研究 | 第117-130页 |
| 5.1 前言 | 第117页 |
| 5.2 材料 | 第117-118页 |
| 5.2.1 菌株资源 | 第117页 |
| 5.2.2 培养基 | 第117-118页 |
| 5.2.3 主要设备及其来源 | 第118页 |
| 5.3 实验方法 | 第118-120页 |
| 5.3.1 培养条件优化 | 第118-119页 |
| 5.3.2 培养基配方优化 | 第119-120页 |
| 5.3.3 数据统计分析 | 第120页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第120-128页 |
| 5.4.1 LP-4最适生长温度 | 第120-121页 |
| 5.4.2 初始pH对LP-4生长的影响 | 第121页 |
| 5.4.3 接种量对LP-4生长的影响 | 第121-122页 |
| 5.4.4 装液量对LP-4生长的影响 | 第122页 |
| 5.4.5 LP-4培养条件的正交优化 | 第122-123页 |
| 5.4.6 不同碳源对LP-4生长的影响 | 第123-124页 |
| 5.4.7 葡萄糖不同含量对LP-4生长的影响 | 第124-125页 |
| 5.4.8 不同氮源对LP-4生长的影响 | 第125页 |
| 5.4.9 胰蛋白胨不同含量对LP-4生长的影响 | 第125-126页 |
| 5.4.10 不同蔬菜汁对LP-4生长的影响 | 第126-127页 |
| 5.4.11 番茄汁不同含量对LP-4生长的影响 | 第127页 |
| 5.4.12 LP-4增殖培养基正交优化 | 第127-128页 |
| 5.4.13 验证试验 | 第128页 |
| 5.5 本章小结 | 第128-129页 |
| 参考文献 | 第129-130页 |
| 第六章 LP-4菌株在功能发酵食品中的应用初探 | 第130-144页 |
| 6.1 前言 | 第130页 |
| 6.2 材料 | 第130-131页 |
| 6.2.1 菌株资源 | 第131页 |
| 6.2.2 培养基 | 第131页 |
| 6.2.3 主要试剂 | 第131页 |
| 6.2.4 主要设备及其来源 | 第131页 |
| 6.3 实验方法 | 第131-136页 |
| 6.3.1 乳酸菌的培养及处理 | 第131页 |
| 6.3.2 发酵酸奶的制备 | 第131-133页 |
| 6.3.3 发酵泡菜的制备 | 第133-135页 |
| 6.3.4 酸奶样品处理 | 第135页 |
| 6.3.5 泡菜可溶性物质提取 | 第135页 |
| 6.3.6 泡菜和酸奶的抗氧化功能测定 | 第135-136页 |
| 6.3.7 LP-4在酸奶储藏过程中活菌数的测定 | 第136页 |
| 6.3.8 数据分析 | 第136页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第136-141页 |
| 6.4.1 LP-4对发酵酸奶品质的影响 | 第136-138页 |
| 6.4.2 LP-4对发酵蔬菜品质的影响 | 第138-140页 |
| 6.4.3 LP-4在酸奶储藏过程中活菌数量的变化 | 第140-141页 |
| 6.5 本章小结 | 第141页 |
| 参考文献 | 第141-144页 |
| 全文总结 | 第144-146页 |
| 论文创新点 | 第146-147页 |
| 展望 | 第147-148页 |
| 致谢 | 第148-149页 |
| 博士工作期间的论文及专利 | 第149页 |
