| 摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 1 前言 | 第13-30页 |
| ·GAD 概述 | 第13-16页 |
| ·GAD 的结构与分布 | 第13页 |
| ·GAD 的性质与功能 | 第13页 |
| ·大肠杆菌 GAD | 第13-14页 |
| ·大肠杆菌 AS 1.505 | 第14页 |
| ·GAD 特性的研究概况 | 第14-16页 |
| ·GAD 分离提取的研究概况 | 第16页 |
| ·双水相体系概述 | 第16-27页 |
| ·双水相体系萃取技术简介 | 第16-17页 |
| ·双水相体系组成种类和相图 | 第17-20页 |
| ·双水相体系成相原理 | 第20页 |
| ·双水相体系萃取原理 | 第20-22页 |
| ·双水相体系的热力学模型 | 第22-23页 |
| ·双水相体系萃取技术的局限与展望 | 第23-25页 |
| ·双水相体系萃取生物活性物质研究进展 | 第25-27页 |
| ·研究的目的与意义 | 第27-28页 |
| ·研究内容与技术路线 | 第28-30页 |
| ·主要研究内容 | 第28-29页 |
| ·技术路线 | 第29-30页 |
| 2 材料与方法 | 第30-37页 |
| ·试验材料 | 第30-31页 |
| ·菌种与培养基 | 第30页 |
| ·原料与试剂 | 第30-31页 |
| ·仪器与设备 | 第31页 |
| ·大肠杆菌粗酶液制备 | 第31-32页 |
| ·大肠杆菌菌体细胞发酵培养 | 第31-32页 |
| ·大肠杆菌菌体细胞收集 | 第32页 |
| ·大肠杆菌菌体细胞破碎 | 第32页 |
| ·双水相体系萃取大肠杆菌 GAD | 第32-34页 |
| ·成相物质选择 | 第32页 |
| ·双水相相图绘制 | 第32-33页 |
| ·双水相体系建立 | 第33页 |
| ·选择双水相体系萃取大肠杆菌 GAD | 第33页 |
| ·双水相体系萃取能力评价 | 第33页 |
| ·K_2HPO_4-PEG 双水相体系萃取条件优化 | 第33-34页 |
| ·检测方法 | 第34-35页 |
| ·大肠杆菌生物量测定 | 第34页 |
| ·大肠杆菌细胞破碎率测定 | 第34-35页 |
| ·大肠杆菌蛋白含量测定 | 第35页 |
| ·大肠杆菌 GAD 活力测定 | 第35页 |
| ·双水相萃取能力计算 | 第35-36页 |
| ·数据处理 | 第36-37页 |
| 3 结果与分析 | 第37-59页 |
| ·双水相体系的建立 | 第37-43页 |
| ·成相物质的选择 | 第37-38页 |
| ·双水相相图绘制 | 第38-41页 |
| ·双水相体系系线（TLL）绘制 | 第41-43页 |
| ·双水相体系的选择 | 第43-50页 |
| ·K_2HPO_4-PEG 双水相体系萃取 GAD | 第43-45页 |
| ·(NH_4)_2SO_4-PEG 双水相体系萃取 GAD | 第45-47页 |
| ·C_6H_5O_7Na_3-PEG 双水相体系萃取 GAD | 第47-50页 |
| ·双水相体系萃取能力综合评价 | 第50页 |
| ·K_2HPO_4-PEG 双水相体系萃取 GAD 条件优化 | 第50-59页 |
| ·绘制 K_2HPO_4-PEG 双水相体系相图 | 第50-51页 |
| ·PEG 分子量对 GAD 萃取的影响 | 第51-52页 |
| ·PEG 与 K_2HPO_4质量分数对 GAD 萃取的影响 | 第52-53页 |
| ·pH 对 GAD 萃取的影响 | 第53-54页 |
| ·NaCl 添加量对 GAD 萃取的影响 | 第54-55页 |
| ·响应面优化萃取条件 | 第55-59页 |
| 4 讨论 | 第59-62页 |
| ·成相盐种类对 GAD 萃取的影响 | 第59页 |
| ·PEG 分子量对 GAD 萃取的影响 | 第59-60页 |
| ·PEG 质量分数对 GAD 萃取的影响 | 第60页 |
| ·成相盐质量分数对 GAD 萃取的影响 | 第60页 |
| ·pH 对 GAD 萃取的影响 | 第60-61页 |
| ·NaCl 添加量对 GAD 萃取的影响 | 第61页 |
| ·对 GAD 萃取产生影响的其他因素 | 第61-62页 |
| 5 结论 | 第62-63页 |
| ·双水相体系的建立 | 第62页 |
| ·双水相体系的选择 | 第62页 |
| ·双水相体系萃取条件的优化 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-78页 |
| 攻读硕士学位其间发表的学术论文 | 第78页 |
