| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第10-25页 |
| 1.1 课题背景及研究的目的和意义 | 第10页 |
| 1.2 国内外在该方向的研究现状及分析 | 第10-22页 |
| 1.2.1 合成胞外多糖菌群及胞外多糖的分类 | 第11页 |
| 1.2.2 乳酸菌胞外多糖的组成及结构 | 第11页 |
| 1.2.3 嗜热链球菌胞外多糖生物合成及遗传调控 | 第11-16页 |
| 1.2.4 胞外多糖分离纯化 | 第16-17页 |
| 1.2.5 胞外多糖结构鉴定 | 第17-18页 |
| 1.2.6 构效关系 | 第18-20页 |
| 1.2.7 胞外多糖的应用 | 第20-22页 |
| 1.3 本文的主要研究内容 | 第22-25页 |
| 1.3.1 明确CS6菌株产EPS最优发酵条件 | 第23页 |
| 1.3.2 菌株CS6的EPS分离纯化与结构分析 | 第23页 |
| 1.3.3 根据eps基因簇的序列信息预测其EPS的单体组成 | 第23页 |
| 1.3.4 进行EPS抗氧化活性评价 | 第23-24页 |
| 1.3.5 技术路线 | 第24-25页 |
| 第2章 材料和方法 | 第25-37页 |
| 2.1 材料和仪器 | 第25-29页 |
| 2.1.1 菌株的来源 | 第25页 |
| 2.1.2 实验材料和试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.3 实验仪器和设备 | 第26-27页 |
| 2.1.4 实验所需的引物 | 第27-28页 |
| 2.1.5 实验试剂的配制 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-37页 |
| 2.2.1 菌种的活化与传代 | 第29页 |
| 2.2.2 发酵乳的制备 | 第29页 |
| 2.2.3 胞外多糖的提取 | 第29页 |
| 2.2.4 菌体数计算 | 第29-30页 |
| 2.2.5 胞外多糖含量的测定 | 第30页 |
| 2.2.6 S.thermophilusCS6产EPS条件研究及优化 | 第30-32页 |
| 2.2.7 胞外多糖的DEAE-52柱层析纯化 | 第32页 |
| 2.2.8 胞外多糖的结构分析 | 第32-33页 |
| 2.2.9 胞外多糖体外抗氧化活性研究 | 第33-34页 |
| 2.2.10 22株S.thermophiluseps基因簇序列分析 | 第34-37页 |
| 第3章 嗜热链球菌CS6产EPS培养条件研究及优化 | 第37-47页 |
| 3.1 培养基初始pH值单因素分析 | 第37-38页 |
| 3.2 Plackett-Burman(PB)试验结果与分析 | 第38-41页 |
| 3.3 中心复合实验设计(CCD)结果与响应面分析 | 第41-46页 |
| 3.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第4章 EPS的分离纯化、结构鉴定及体外抗氧化活性分析 | 第47-57页 |
| 4.1 胞外多糖的DEAE-52柱层析分离纯化 | 第47-48页 |
| 4.2 胞外多糖的结构鉴定 | 第48-50页 |
| 4.2.1 胞外多糖红外光谱分析 | 第48-49页 |
| 4.2.2 胞外多糖分子量测定 | 第49-50页 |
| 4.3 胞外多糖体外抗氧化活性分析 | 第50-55页 |
| 4.3.1 胞外多糖对DPPH清除作用 | 第50-52页 |
| 4.3.2 胞外多糖对羟自由基清除作用 | 第52-53页 |
| 4.3.3 胞外多糖对超氧自由基清除作用 | 第53-55页 |
| 4.4 本章小结 | 第55-57页 |
| 第5章 嗜热链球菌eps基因簇序列分析 | 第57-71页 |
| 5.1 eps基因簇相关基因的扩增 | 第57-61页 |
| 5.2 eps基因簇序列分析 | 第61-69页 |
| 5.3 本章小结 | 第69-71页 |
| 结论 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-82页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其它成果 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
