| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 缩写符号说明 | 第8-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 乳脂BCFA的结构与组成 | 第13-16页 |
| 1.1.1 BCFA的结构 | 第13页 |
| 1.1.2 动物乳脂中BCFA的组成 | 第13-14页 |
| 1.1.3 人乳脂中BCFA的组成 | 第14-16页 |
| 1.2 BCFA的分离与检测方法 | 第16-17页 |
| 1.2.1 BCFA的尿素溶剂分离富集法 | 第17页 |
| 1.2.2 BCFA的检测方法 | 第17页 |
| 1.3 BCFA与新生儿肠道健康的关系 | 第17-19页 |
| 1.3.1 新生儿肠道中BCFA的来源与组成 | 第18页 |
| 1.3.2 新生儿坏死性结肠炎 | 第18页 |
| 1.3.3 BCFA与新生儿坏死性结肠炎的关系 | 第18-19页 |
| 1.3.4 BCFA的其他生理功能 | 第19页 |
| 1.4 甘三酯的结构对乳脂肠道吸收代谢与生理功能的影响 | 第19-20页 |
| 1.4.1 脂肪的体内消化与吸收代谢 | 第19页 |
| 1.4.2 乳脂TAG结构分布特征 | 第19-20页 |
| 1.4.3 乳脂TAG的结构差异对肠道吸收代谢与生理功能的影响 | 第20页 |
| 1.5 LPS-TLR 4/NF-κB炎症信号通路与抗炎研究 | 第20-22页 |
| 1.6 立题依据与意义 | 第22页 |
| 1.7 课题主要研究内容 | 第22-24页 |
| 第二章 urea-TLC结合AgNO3-TLC微量分离BCFA方法的建立 | 第24-42页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第24页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-26页 |
| 2.3.1 采样 | 第25页 |
| 2.3.2 乳脂的总脂肪提取 | 第25页 |
| 2.3.3 urea-TLC实验步骤 | 第25页 |
| 2.3.4 AgNO_3-TLC实验步骤 | 第25-26页 |
| 2.3.5 脂肪酸组成的定性分析 | 第26页 |
| 2.3.6 数据统计分析 | 第26页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第26-40页 |
| 2.4.1 urea-TLC的薄层板制备及分离条件优化 | 第26-28页 |
| 2.4.2 urea-TLC的脂肪酸迁移规律 | 第28-32页 |
| 2.4.3 AgNO_3-TLC的薄层板制备及分离条件优化 | 第32-35页 |
| 2.4.4 人乳脂、动物乳脂及鱼油中总BCFA的分离与检测 | 第35-40页 |
| 2.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 乳脂BCFA在中极性脂与TAG上的分布特征 | 第42-56页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第42-43页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第42-43页 |
| 3.2.2 实验仪器与设备 | 第43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-45页 |
| 3.3.1 采样 | 第43页 |
| 3.3.2 乳脂的总脂肪提取 | 第43页 |
| 3.3.3 SPE分离中极性脂 | 第43页 |
| 3.3.4 TLC分离提取TAG | 第43-44页 |
| 3.3.5 胰脂酶水解sn-2 单甘脂 | 第44页 |
| 3.3.6 脂肪酸组成的定量分析 | 第44-45页 |
| 3.3.7 数据统计分析 | 第45页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第45-55页 |
| 3.4.1 乳脂BCFA在中极性脂的分布特征 | 第45-49页 |
| 3.4.2 乳脂BCFA在TAG中的组成情况 | 第49-51页 |
| 3.4.3 乳脂BCFA在sn-2 位上的组成情况 | 第51-53页 |
| 3.4.4 乳脂的sn-2 位BCFA在TAG中相对分布比例 | 第53-55页 |
| 3.5 本章小结 | 第55-56页 |
| 第四章7种不同碳链长度和支链位置的BCFA的抗炎作用与机制 | 第56-68页 |
| 4.1 引言 | 第56页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第56-57页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第56-57页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第57页 |
| 4.3 实验方法 | 第57-59页 |
| 4.3.1 细胞培养 | 第57页 |
| 4.3.2 BCFA底物的添加及炎症刺激 | 第57页 |
| 4.3.3 细胞活性检测 | 第57-58页 |
| 4.3.4 细胞脂质的提取与分析 | 第58页 |
| 4.3.5 细胞总RNA提取与反转录制备cDNA | 第58-59页 |
| 4.3.6 琼脂糖凝胶电泳半定量PCR与实时荧光定量PCR | 第59页 |
| 4.3.7 数据统计分析 | 第59页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第59-66页 |
| 4.4.1 BCFA对炎症性肠道细胞的细胞活性的影响 | 第59-60页 |
| 4.4.2 BCFA对肠道细胞中的脂肪酸组成的影响 | 第60-63页 |
| 4.4.3 BCFA对炎症性肠道细胞炎症因子IL-8 表达的影响 | 第63-64页 |
| 4.4.4 BCFA对炎症性肠道细胞TLR 4 受体表达的影响 | 第64页 |
| 4.4.5 BCFA对炎症性肠道细胞NF-κB表达的影响 | 第64-65页 |
| 4.4.6 BCFA的抗炎机制初探 | 第65-66页 |
| 4.5 本章小结 | 第66-68页 |
| 第五章 含BCFA的甘三酯（TAG）的结构与抗炎功效及细胞吸收代谢的关系 | 第68-80页 |
| 5.1 引言 | 第68页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第68-69页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第68-69页 |
| 5.2.2 实验仪器与设备 | 第69页 |
| 5.3 实验方法 | 第69-71页 |
| 5.3.1 采样 | 第69页 |
| 5.3.2 细胞培养 | 第69页 |
| 5.3.3 脂肪酸组成一致的sn-2 MAG与FFA的制备 | 第69-70页 |
| 5.3.4 sn-2 MAG与FFA的添加及炎症刺激 | 第70页 |
| 5.3.5 细胞活性检测 | 第70页 |
| 5.3.6 细胞脂质的提取与分析 | 第70页 |
| 5.3.7 细胞总RNA提取与反转录制备cDNA | 第70页 |
| 5.3.8 琼脂糖凝胶电泳半定量PCR与实时荧光定量PCR | 第70页 |
| 5.3.9 数据统计分析 | 第70-71页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第71-78页 |
| 5.4.1 sn-2 MAG与FFA形态的BCFA在肠道细胞中吸收代谢的差异 | 第71-75页 |
| 5.4.2 sn-2 MAG与FFA形态对BCFA调节细胞活性的影响 | 第75-76页 |
| 5.4.3 sn-2 MAG与FFA形态对BCFA调节细胞因子IL-8 表达的影响 | 第76页 |
| 5.4.4 sn-2 MAG与FFA形态对BCFA调节细胞TLR 4 受体表达的影响 | 第76-77页 |
| 5.4.5 sn-2 MAG与FFA形态对BCFA调节细胞NF-κB表达的影响 | 第77-78页 |
| 5.5 本章小结 | 第78-80页 |
| 主要结论和展望 | 第80-83页 |
| 论文创新点 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 附录：攻读博士学位期间研究成果及获得的奖励 | 第95页 |
