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缓解氧化应激Lactobacillus fermentum L8的筛选及益生机制研究

摘要第2-5页
Abstract第5-8页
符号说明第13-15页
第一章 文献综述第15-28页
    1 乳酸菌第15-18页
        1.1 乳酸菌简介第15页
        1.2 乳酸菌的益生功能第15-18页
    2 乳酸菌对酒精性肝损伤的保护作用第18-22页
        2.1 酒精性肝损伤(ALD)第18页
        2.2 ALD的机制第18-22页
    3 乳酸菌对高脂膳食诱导氧化应激的缓解作用第22-26页
        3.1 肠道菌群与人体健康第22-23页
        3.2 高脂饮食对肠道菌群的影响第23-24页
        3.3 肠道菌群对脂质代谢第24-25页
        3.4 高脂膳食与肠道氧化应激第25-26页
    4 研究目的、意义及主要内容第26-28页
        4.1 研究目的与意义第26-27页
        4.2 主要研究内容第27-28页
第二章 具有缓解氧化应激能力益生菌的体外筛选第28-49页
    1 实验材料第28-30页
        1.1 实验菌株及培养基第28页
        1.2 主要试剂第28-29页
        1.3 主要仪器第29页
        1.4 常用试剂的配制第29-30页
    2 实验方法第30-34页
        2.1 样液的制备第30-31页
        2.2 益生菌的SOD活性测定第31页
        2.3 益生菌对羟自由基(·OH)的清除能力测定第31-32页
        2.4 益生菌对DPPH自由基(DPPH·)的清除能力测定第32页
        2.5 益生菌的还原能力测定第32页
        2.6 乳酸菌降胆固醇及甘油三酯的研究第32-33页
        2.7 乳酸菌耐酸耐胆盐试验测定第33-34页
        2.8 胆盐浓度对菌株降胆固醇能力的影响第34页
        2.9 菌株抑制致病菌试验第34页
        2.10 数据处理和统计分析第34页
    3 结果与分析第34-46页
        3.1 乳酸菌发酵液抗氧化能力比较第35-36页
        3.2 乳酸菌不同组分抗氧化能力比较第36-38页
        3.3 乳酸菌不同组分还原能力的测定第38页
        3.4 乳酸菌T-SOD活性第38-39页
        3.5 乳酸菌GSH-Px活性第39-40页
        3.6 乳酸菌发酵液与各组分综合抗氧化能力比较第40页
        3.7 乳酸菌耐酸耐胆盐试验第40-42页
        3.8 乳酸菌降胆固醇能力的测定第42-44页
        3.9 菌株抑制致病菌试验第44-46页
    4 讨论第46-47页
    5 小结第47-49页
第三章 乳酸菌的生物学特性和应用初步研究第49-61页
    1 材料和方法第49-52页
        1.1 主要仪器和设备第49页
        1.2 试剂与材料第49页
        1.3 菌株第49-50页
        1.4 常用试剂及培养基的配制第50页
        1.5 试验方法第50-52页
        1.6 统计学处理第52页
    2 结果与分析第52-59页
        2.1 乳酸菌生理生化鉴定第52-53页
        2.2 乳酸菌API鉴定结果第53-54页
        2.3 乳酸菌16S rRNA序列鉴定第54-55页
        2.4 乳酸菌生长曲线第55页
        2.5 乳酸菌发酵性能第55-57页
        2.6 乳酸菌的黏附能力第57-58页
        2.7 乳酸菌对抗生素的耐受能力第58-59页
    3 讨论第59页
    4 小结第59-61页
第四章 Lactobacillus fermentum L8对大鼠急性酒精性肝损伤的保护的实验研究第61-75页
    1 材料与方法第61-64页
        1.1 乳酸菌第61页
        1.2 实验动物第61页
        1.3 主要实验仪器第61-62页
        1.4 药品与试剂第62页
        1.5 动物分组及处理第62页
        1.6 样本处理第62页
        1.7 血清生化指标及细胞因子的测定第62-63页
        1.8 肝匀浆生化指标的测定第63页
        1.9 流式细胞仪测定大鼠肝脏细胞指数第63页
        1.10 肝脏组织形态学第63页
        1.11 数据处理第63-64页
    2 结果第64-71页
        2.1 造模后大鼠状态第64页
        2.2 L.fermentum L8对大鼠血清中生化指标的影响第64-65页
        2.3 L.fermentum L8发酵乳对急性酒精性肝损伤大鼠抗氧化酶活力的影响第65-66页
        2.4 L.fermentum L8对急性酒精性肝损伤大鼠炎症反应的影响第66-67页
        2.5 L.fermentum L8发酵乳对大鼠肝脏线粒体ATPase活性的影响第67页
        2.6 L.fermentum L8对酒精性肝损伤大鼠肝脏病理形态学的影响第67-68页
        2.7 L.fermentum L8对大鼠肝细胞抗氧化特异性蛋白Nrf2表达的影响第68-69页
        2.8 L.fermentum L8对大鼠肝细胞凋亡百分数的影响第69-71页
    3 讨论第71-73页
    4 小结第73-75页
第五章 Lactobacillus fermentum L8缓解高脂膳食诱导的氧化应激实验研究第75-93页
    1 材料与方法第75-80页
        1.1 材料与试剂第75-76页
        1.2 实验方法第76-77页
        1.3 样本处理第77-78页
        1.4 测定指标和方法第78-79页
        1.5 大鼠肠道的菌群测定第79页
        1.6 实验数据分析与统计第79-80页
    2 结果与分析第80-89页
        2.1 菌株的毒性评价第80页
        2.2 对各组大鼠脏器系数的影响第80-81页
        2.3 对高脂血症大鼠血脂的影响第81页
        2.4 肝脏中胆固醇的含量第81-82页
        2.5 粪便中胆固醇和胆汁酸的含量第82页
        2.6 对大鼠血清中ALT、AST的影响第82-83页
        2.7 对大鼠血清及结肠内容物氧化指标的影响第83页
        2.8 对大鼠肝脏GSH、GSH-Px的影响第83-84页
        2.9 对大鼠肝细胞凋亡百分数的影响第84-85页
        2.10 对肝脏、心脏切片的观察第85-87页
        2.11 大鼠肠道微生物物种丰度及其差异性第87-89页
        2.12 大鼠肠道菌群与氧化指标的相关性分析第89页
    3 讨论第89-91页
    4 小结第91-93页
参考文献第93-112页
致谢第112-113页
项目支持第113-114页
发明专利申请、授权第114-115页
攻读学位期间发表的论文目录第115-116页

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