| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-8页 |
| 文献综述 | 第8-14页 |
| 引 言 | 第14-15页 |
| 1． 材料与方法 | 第15-22页 |
| 1．1 试验材料与试剂 | 第15-16页 |
| 1．2 试验仪器与设备 | 第16页 |
| 1．3 试验方法 | 第16-21页 |
| 1．4 分析项目与测定方法 | 第21-22页 |
| 2． 结果与分析 | 第22-41页 |
| 2．1 提取条件对提取率及提取液抗菌活性的影响 | 第22-28页 |
| 2．1．1 干燥方法对提取率及提取液抗菌活性的影响 | 第22-23页 |
| 2．1．2 溶剂对提取率及提取液抗菌活性的影响 | 第23-25页 |
| 2．1．3 液料比对提取率的影响 | 第25-26页 |
| 2．1．4 温度对提取率的影响 | 第26-27页 |
| 2．1．5 时间对提取率的影响 | 第27页 |
| 2．1．6 浸提条件正交实验结果与分析 | 第27-28页 |
| 2．2 不同器宫及不同生长期的抗菌活性比较 | 第28-30页 |
| 2．2．1 不同器官抗菌活性的比较 | 第28-29页 |
| 2．2．2 不同生长期抗菌活性的比较 | 第29-30页 |
| 2．3 紫苏提取液抗菌性能 | 第30-35页 |
| 2．3．1 紫苏提取液对各菌的最低抑菌浓度 | 第30-31页 |
| 2．3．2 pH对紫苏提取液抗菌活性的影响 | 第31-32页 |
| 2．3．3 紫苏提取液抗菌活性成分的热稳定性 | 第32-33页 |
| 2．3．4 食盐对紫苏提取液抗菌活性的影响 | 第33-34页 |
| 2．3．5 蔗糖对紫苏提取液抗菌活性的影响 | 第34-35页 |
| 2．4 提取液组分的分离及抗菌性试验 | 第35-37页 |
| 2．5 应用性试验 | 第37-41页 |
| 3． 结 论 | 第41-42页 |
| 致 谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |