| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 1 前言 | 第14-29页 |
| 1.1 植物蛋白质研究概况 | 第14-19页 |
| 1.1.1 植物蛋白质的分类 | 第14-15页 |
| 1.1.2 植物蛋白质的营养功能 | 第15-17页 |
| 1.1.3 植物蛋白质的分离纯化方法 | 第17-19页 |
| 1.2 植物蛋白源多肽的研究概况 | 第19-24页 |
| 1.2.1 植物蛋白源多肽的功能性质 | 第19-22页 |
| 1.2.2 植物蛋白源多肽的制备方法研究 | 第22-23页 |
| 1.2.3 植物蛋白源多肽的应用 | 第23-24页 |
| 1.3 紫苏研究概况 | 第24-27页 |
| 1.3.1 紫苏籽的开发利用 | 第24-26页 |
| 1.3.2 紫苏饼粕的研究概况 | 第26-27页 |
| 1.4 研究目的意义及内容 | 第27-29页 |
| 1.4.1 研究目的意义 | 第27-28页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第28-29页 |
| 2 紫苏分离蛋白的制备及其功能性质研究 | 第29-47页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第29-31页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第29-30页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第30-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-36页 |
| 2.2.1 原料的预处理 | 第31页 |
| 2.2.2 紫苏蛋白提取工艺流程 | 第31页 |
| 2.2.3 蛋白得率的计算 | 第31页 |
| 2.2.4 单因素实验 | 第31-32页 |
| 2.2.5 响应面法优化实验 | 第32页 |
| 2.2.6 蛋白质含量测定 | 第32-34页 |
| 2.2.7 SDS-PAGE电泳分析 | 第34-35页 |
| 2.2.8 蛋白质功能性质分析 | 第35-36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-46页 |
| 2.3.1 单因素实验结果 | 第36-39页 |
| 2.3.2 响应面优化实验结果 | 第39-45页 |
| 2.3.3 SDS-PAGE电泳分析 | 第45页 |
| 2.3.4 紫苏分离蛋白的功能性质分析 | 第45-46页 |
| 2.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 3 紫苏多肽分离纯化及其活性组分筛选 | 第47-56页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第47-49页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第47-48页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第48-49页 |
| 3.2 实验方法 | 第49-51页 |
| 3.2.1 紫苏分离蛋白酶解产物的制备 | 第49页 |
| 3.2.2 超滤法分离紫苏多肽 | 第49页 |
| 3.2.3 凝胶过滤层析法分离紫苏多肽 | 第49-50页 |
| 3.2.4 紫苏多肽清除DPPH自由基能力的测定 | 第50页 |
| 3.2.5 紫苏活性多肽的高效液相色谱分析 | 第50-51页 |
| 3.2.6 紫苏活性多肽的质谱分析 | 第51页 |
| 3.2.7 统计处理 | 第51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-55页 |
| 3.3.1 超滤分离纯化组分的抗氧化性分析 | 第51-52页 |
| 3.3.2 紫苏多肽PSP3的凝胶层析分离纯化及抗氧化性分析 | 第52-54页 |
| 3.3.3 紫苏多肽PSP3c分子量及氨基酸序列测定 | 第54-55页 |
| 3.4 本章小结 | 第55-56页 |
| 4 紫苏多肽PSP3c对肿瘤细胞的凋亡作用 | 第56-66页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第57-58页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第57页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第57-58页 |
| 4.2 实验方法 | 第58-60页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第58页 |
| 4.2.2 MTT法检测细胞活性 | 第58-59页 |
| 4.2.3 Hoechst 33258染色法检测HepG2细胞的凋亡 | 第59页 |
| 4.2.4 Annexin V-FITC/PI双染色法检测HepG2细胞的凋亡 | 第59页 |
| 4.2.5 caspase-3活性检测 | 第59-60页 |
| 4.2.6 统计处理 | 第60页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第60-65页 |
| 4.3.1 MTT法检测PSP3c对肿瘤细胞增殖的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.2 荧光显微镜检测PSP3c对肿瘤细胞HepG2的促凋亡作用 | 第61-62页 |
| 4.3.3 Annexin V-FITC/PI双染色法检测HepG2细胞的凋亡 | 第62-64页 |
| 4.3.4 PSP3c对caspase-3活性的影响 | 第64-65页 |
| 4.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 5 紫苏多肽PSP3c体内抗肿瘤与抗氧化作用的研究 | 第66-77页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第66-67页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第66-67页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第67页 |
| 5.2 实验方法 | 第67-71页 |
| 5.2.1 模型动物建立 | 第67-68页 |
| 5.2.2 动物分组及给样方案 | 第68页 |
| 5.2.3 测试样本的采集与预处理 | 第68页 |
| 5.2.4 肿瘤抑制率、免疫器官指数的测定 | 第68-69页 |
| 5.2.5 小鼠外周血白细胞和淋巴细胞的测定 | 第69页 |
| 5.2.6 小鼠血液和肝脏中丙二醛(MDA)含量的测定 | 第69页 |
| 5.2.7 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活力的测定 | 第69-70页 |
| 5.2.8 超氧化物歧化酶(SOD)活力的测定 | 第70页 |
| 5.2.9 统计处理 | 第70-71页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第71-76页 |
| 5.3.1 PSP3c对H22肝癌小鼠肿瘤增殖的抑制作用 | 第71页 |
| 5.3.2 PSP3c对H22肝癌小鼠免疫器官的影响 | 第71-72页 |
| 5.3.3 PSP3c对H22肝癌小鼠外周血免疫细胞数的影响 | 第72-73页 |
| 5.3.4 PSP3c对H22肝癌小鼠血液和肝脏中MDA含量的影响 | 第73-74页 |
| 5.3.5 PSP3c对H22肝癌小鼠血液和肝脏中GSH-Px活性的影响 | 第74-75页 |
| 5.3.6 PSP3c对H22肝癌小鼠血液和肝脏中SOD活性的影响 | 第75-76页 |
| 5.4 本章小结 | 第76-77页 |
| 6 紫苏多肽抗氧化功能食品的研制 | 第77-89页 |
| 6.1 实验材料与仪器 | 第77-79页 |
| 6.1.1 材料与试剂 | 第77-78页 |
| 6.1.2 仪器与设备 | 第78-79页 |
| 6.2 实验方法 | 第79-82页 |
| 6.2.1 紫苏酸奶制备工艺流程 | 第79页 |
| 6.2.2 操作要点 | 第79页 |
| 6.2.3 单因素实验 | 第79-80页 |
| 6.2.4 正交实验 | 第80页 |
| 6.2.5 感官评价 | 第80-81页 |
| 6.2.6 抗氧化性测定 | 第81-82页 |
| 6.2.7 统计处理 | 第82页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第82-88页 |
| 6.3.1 单因素实验结果 | 第82-85页 |
| 6.3.2 正交实验结果 | 第85-86页 |
| 6.3.3 紫苏酸奶的抗氧化性分析 | 第86-88页 |
| 6.4 本章小结 | 第88-89页 |
| 7 结论与展望 | 第89-92页 |
| 7.1 结论 | 第89-90页 |
| 7.2 展望 | 第90-91页 |
| 7.3 创新点 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-104页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
