| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 1 前言 | 第12-19页 |
| 1.1 自由基 | 第12页 |
| 1.2 抗氧化肽研究进展 | 第12-16页 |
| 1.2.1 非乳源抗氧化肽 | 第13页 |
| 1.2.2 乳源抗氧化肽 | 第13-14页 |
| 1.2.3 抗氧化肽制备方法 | 第14-15页 |
| 1.2.4 抗氧化肽的分离纯化 | 第15-16页 |
| 1.3 羊乳及羊乳蛋白多肽的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4 本课题的意义及研究内容 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-26页 |
| 2.1 材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 主要材料与试剂 | 第19页 |
| 2.1.2 主要设备 | 第19-20页 |
| 2.2 技术路线及实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 技术路线 | 第20页 |
| 2.2.2 脱脂羊乳的制备 | 第20页 |
| 2.2.3 羊乳酪蛋白的提取 | 第20页 |
| 2.2.4 水解羊乳酪蛋白最佳用酶的选择 | 第20-21页 |
| 2.2.5 酶解酪蛋白制备抗氧化肽工艺的优化 | 第21页 |
| 2.2.6 羊乳酪蛋白抗氧化肽的超滤分离 | 第21页 |
| 2.2.7 大孔树脂DA201-C对酶解液初步分离 | 第21-22页 |
| 2.2.8 凝胶色谱分离纯化 | 第22页 |
| 2.2.9 RP-HPLC法分析肽组成图谱 | 第22-23页 |
| 2.3 测定方法 | 第23-26页 |
| 2.3.1 蛋白质浓度的测定 | 第23页 |
| 2.3.2 肽浓度的测定 | 第23页 |
| 2.3.3 蛋白水解度的测定 | 第23页 |
| 2.3.4 抗氧化肽的测定 | 第23-25页 |
| 2.3.7 IC_(50)的测定 | 第25-26页 |
| 3 结果与讨论 | 第26-67页 |
| 3.1 羊乳酪蛋白制备抗氧化肽最佳用酶的选择 | 第26-28页 |
| 3.1.1 蛋白质标准曲线测定 | 第26页 |
| 3.1.2 最佳用酶的选择 | 第26-28页 |
| 3.2 Alcalase酶解羊乳酪蛋白制备抗氧化肽 | 第28-42页 |
| 3.2.1 温度对酶解羊乳酪蛋白水解度及抗氧化性效果的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.2 pH对酶解羊乳酪蛋白水解度及抗氧化性的影响 | 第29-30页 |
| 3.2.3 底物浓度变化对水解度及抗氧化性效果的影响分析 | 第30-31页 |
| 3.2.4 酶加量对水解羊乳酪蛋白效果的分析 | 第31-32页 |
| 3.2.5 水解时间对酶解液抗氧化性及水解度的影响分析 | 第32页 |
| 3.2.6 Alcalase酶解羊乳酪蛋白影响因素的筛选 | 第32-35页 |
| 3.2.7 最陡爬坡实验结果分析 | 第35-36页 |
| 3.2.8 Alcalase酶解酪蛋白工艺条件优化 | 第36-42页 |
| 3.3 复合酶水解羊乳酪蛋白制备抗氧化肽 | 第42-57页 |
| 3.3.1 温度对复合酶解液水解度及抗氧化性的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.2 pH对复合酶水解羊乳酪蛋白效果的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.3 底物浓度对复合酶制备抗氧化肽的效果分析 | 第44-45页 |
| 3.3.4 复合酶加量对酶解液水解度及抗氧化性影响分析 | 第45页 |
| 3.3.5 复合酶配比对酶解液水解度及抗氧化性的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.6 水解时间引起复合酶解液水解度及抗氧化性的变化 | 第46-47页 |
| 3.3.7 复合酶酶解羊乳酪蛋白主因子筛选 | 第47-50页 |
| 3.3.8 爬坡实验与结果分析 | 第50页 |
| 3.3.9 复合酶酶解羊乳酪蛋白工艺条件优化 | 第50-57页 |
| 3.4 羊乳酪蛋白抗氧化肽的超滤 | 第57-58页 |
| 3.4.1 肽的标准曲线测定 | 第57-58页 |
| 3.4.2 抗氧化肽的超滤分离 | 第58页 |
| 3.5 抗氧化肽的DA201-C大孔树脂脱盐 | 第58-61页 |
| 3.5.1 DA201-C大孔树脂对抗氧化肽的静态吸附曲线 | 第58-59页 |
| 3.5.2 DA201-C大孔树脂对抗氧化肽的静态解吸曲线 | 第59-60页 |
| 3.5.3 pH对DA201-C大孔树脂吸附抗氧化肽的影响 | 第60页 |
| 3.5.4 乙醇浓度对DA201-C大孔树脂解吸抗氧化肽的影响 | 第60-61页 |
| 3.5.5 羊乳酪蛋白酶解物脱盐前后抗氧化性的测定 | 第61页 |
| 3.6 凝胶色谱分离纯化抗氧化肽 | 第61-66页 |
| 3.6.1 不同洗脱剂对抗氧化肽凝胶色谱纯化效果的影响 | 第61-63页 |
| 3.6.2 上样浓度对抗氧化肽凝胶色谱图的影响 | 第63-64页 |
| 3.6.3 洗脱流速对抗氧化肽凝胶色谱纯化效果分析 | 第64-65页 |
| 3.6.4 葡聚糖SephadexG-15分离抗氧化肽的凝胶图谱 | 第65-66页 |
| 3.7 RP-HPLC法组分分析 | 第66-67页 |
| 4. 结论、创新点及展望 | 第67-69页 |
| 4.1 结论 | 第67-68页 |
| 4.2 创新点 | 第68页 |
| 4.3 展望 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-77页 |
| 攻读硕士学位期间发表的成果 | 第77-78页 |
