| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1 前言 | 第8-16页 |
| 1.1 研究背景 | 第8-10页 |
| 1.1.1 食用油发展现状 | 第8页 |
| 1.1.2 花生及花生油生产现状 | 第8-9页 |
| 1.1.3 花生及花生油市场现状 | 第9-10页 |
| 1.2 研究现状 | 第10-14页 |
| 1.2.1 花生栽培品种鉴定 | 第10-12页 |
| 1.2.2 食用油油料品种鉴定 | 第12-14页 |
| 1.3 研究内容与目的 | 第14页 |
| 1.4 研究意义 | 第14-16页 |
| 2 花生油DNA定性、定量分析 | 第16-37页 |
| 2.1 材料与方法 | 第16-24页 |
| 2.1.1 花生种子和油脂样品 | 第16-17页 |
| 2.1.2 试剂及仪器设备 | 第17-18页 |
| 2.1.3 花生内标基因引物 | 第18页 |
| 2.1.4 花生种子DNA提取方法筛选 | 第18-20页 |
| 2.1.5 花生油DNA提取方法筛选 | 第20-23页 |
| 2.1.6 花生油DNA普通PCR定性分析 | 第23页 |
| 2.1.7 花生油DNA qPCR定量分析 | 第23-24页 |
| 2.2 结果与分析 | 第24-36页 |
| 2.2.1 花生种子及油脂DNA最佳提取方法的筛选 | 第24-28页 |
| 2.2.2 花生油DNA普通PCR定性分析 | 第28-31页 |
| 2.2.3 花生油DNA qPCR定量分析 | 第31-36页 |
| 2.3 本章小结 | 第36-37页 |
| 3 SSR分子标记技术用于花生油品种鉴定研究 | 第37-49页 |
| 3.1 实验材料 | 第37页 |
| 3.1.1 供试花生种子及油品基因组DNA | 第37页 |
| 3.1.2 SSR分子标记引物 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-38页 |
| 3.3 实验结果 | 第38-47页 |
| 3.3.1 供试花生种子及油脂基因组DNA提取效果 | 第38-39页 |
| 3.3.2 多态性SSR引物聚丙烯酰胺凝胶电泳检测法 | 第39-41页 |
| 3.3.3 多态性SSR引物荧光标记毛细管电泳检测法 | 第41-47页 |
| 3.4 讨论 | 第47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 4 SNP分子标记技术用于花生油品种鉴定研究 | 第49-59页 |
| 4.1 实验材料 | 第49-50页 |
| 4.1.1 供试花生种子及油品基因组DNA | 第49页 |
| 4.1.2 SNP分子标记引物 | 第49-50页 |
| 4.2 实验方法 | 第50-51页 |
| 4.2.1 位基因特异性PCR检测法 | 第50-51页 |
| 4.2.2 高分辨率熔解曲线检测法 | 第51页 |
| 4.3 实验结果 | 第51-57页 |
| 4.3.1 供试花生种子及油脂DNA提取效果 | 第51页 |
| 4.3.2 多态性SNP引物等位基因特异性PCR检测法 | 第51-55页 |
| 4.3.3 多态性SNP引物高分辨率熔解曲线检测法 | 第55-57页 |
| 4.4 讨论 | 第57页 |
| 4.5 本章小结 | 第57-59页 |
| 5 SCoT分子标记技术用于花生油品种鉴定研究 | 第59-63页 |
| 5.1 实验材料 | 第59页 |
| 5.1.1 供试花生种子及油脂DNA | 第59页 |
| 5.1.2 SCoT分子标记引物 | 第59页 |
| 5.2 实验方法 | 第59-60页 |
| 5.3 实验结果 | 第60-61页 |
| 5.3.1 供试花生种子及油品DNA提取效果 | 第60页 |
| 5.3.2 多态性SCoT引物琼脂糖凝胶电泳检测法 | 第60-61页 |
| 5.4 本章小结 | 第61-63页 |
| 6 三种特异性分子标记在花生油料品种溯源中的应用分析 | 第63-64页 |
| 结论与展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 作者简介及攻读硕士学位期间成果 | 第71页 |
