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Lb.paracasei HD1.7微胶囊的研制

中文摘要第2-4页
Abstract第4-6页
第1章 绪论第11-22页
    1.1 乳酸菌第11-14页
        1.1.1 乳酸菌简述第11页
        1.1.2 乳酸菌对人体的生理功能第11-14页
        1.1.3 Lb.paracasei的生理功能第14页
    1.2 微胶囊技术第14-17页
        1.2.1 微胶囊技术的发展历史第14-15页
        1.2.2 微胶囊技术的国内外研究现状第15-16页
        1.2.3 微胶囊技术在食品中的应用第16-17页
    1.3 真空冷冻干燥技术第17-19页
        1.3.1 冷冻干燥技术概述第17-18页
        1.3.2 冻干保护剂的概述第18-19页
    1.4 益生元第19-21页
        1.4.1 益生元的生理生化功能第20页
        1.4.2 益生元的应用第20-21页
    1.5 本课题研究的目的及意义第21-22页
第2章 材料和方法第22-37页
    2.1 试验材料第22-25页
        2.1.1 材料与试剂第22-24页
        2.1.2 仪器第24-25页
    2.2 试验方法第25-37页
        2.2.1 冻干保护剂的筛选第25-26页
        2.2.2 益生元的筛选第26-28页
        2.2.4 初级乳状液的制备方法第28页
        2.2.5 影响乳状液效果的因素第28-30页
        2.2.6 初级乳状液离心保留率的测定第30-31页
        2.2.7 初级包埋第31-32页
        2.2.8 二次乳化作用第32页
        2.2.9 二级包埋第32页
        2.2.10 微胶囊包囊效率的测定第32-33页
        2.2.11 极端胃肠环境对微胶囊菌株活力的影响第33-35页
        2.2.12 微胶囊产品的检验第35-37页
第3章 结果与分析第37-76页
    3.1 保护剂对菌冻干的保护效果第37-44页
        3.1.1 葡萄糖对Lb.paracasei HD1.7冻干的保护效果第37-38页
        3.1.2 蛋白胨对Lb.paracasei HD1.7冻干的保护效果第38-39页
        3.1.3 抗坏血酸对Lb.paracasei HD1.7冻干的保护效果第39-40页
        3.1.4 L—谷氨酸对Lb.paracasei HD1.7冻干的保护效果第40-41页
        3.1.5 乳糖对Lb.paracasei HD1.7冻干的保护效果第41-42页
        3.1.6 脱脂粉对Lb.paracasei HD1.7冻干的保护效果第42-43页
        3.1.7 冻干保护剂复配正交试验结果第43-44页
    3.2 益生元对Lb.paracasei HD1.7的增殖效果第44-45页
        3.2.1 低聚果糖对Lb.paracasei HD1.7的增殖效果第44页
        3.2.2 大豆低聚糖对Lb.paracasei HD1.7的增殖效果第44-45页
    3.3 初级乳化过程中影响因素的分析第45-54页
        3.3.1 不同浓度海藻酸钠对初级乳状液的影响第45-46页
        3.3.2 不同浓度硬酯酸对初级乳状液的影响第46-47页
        3.3.3 不同浓度Span-80对初级乳状液的影响第47-48页
        3.3.4 不同浓度吐温-20对初级乳状液的影响第48-49页
        3.3.5 不同体积比的芯材与壁材混合液对初级乳状液的影响第49-50页
        3.3.6 不同体积比的水相与油相对初级乳状液的影响第50-51页
        3.3.7 不同时间对初级乳状液的影响第51-52页
        3.3.8 不同温度对初级乳状液的影响第52-53页
        3.3.9 不同搅拌速度对初级乳状液的影响第53-54页
    3.4 乳化时间、温度、搅拌速度正交试验结果第54-55页
    3.5 初级包埋过程中影响因素的分析第55-60页
        3.5.1 不同浓度氯化钙对初级微胶囊的影响第55-56页
        3.5.2 不同体积比的初级乳状液与氯化钙对初级微胶囊的影响第56-57页
        3.5.3 不同搅拌速度对初级微胶囊的影响第57-58页
        3.5.4 不同时间对初级微胶囊的影响第58-60页
    3.6 二次乳化过程中影响因素的分析第60-64页
        3.6.1 不同浓度明胶对多重乳状液的影响第60-61页
        3.6.2 不同时间对多重乳状液的影响第61-62页
        3.6.3 不同搅拌速度对多重乳状液的影响第62-64页
    3.7 微胶囊包囊效率的测定结果第64页
    3.8 极端胃肠环境对微胶囊菌株活力的影响第64-69页
        3.8.1 酸性环境对微胶囊菌株活菌数的影响第64-65页
        3.8.2 胃蛋白酶浓度对微胶囊菌株活菌数的影响第65-66页
        3.8.3 胰蛋白酶浓度对微胶囊菌株活菌数的影响第66-67页
        3.8.4 胆盐浓度对微胶囊菌株活菌数的影响第67-68页
        3.8.5 胃液环境对微胶囊菌株活菌数的影响第68-69页
        3.8.6 人工肠液中微胶囊的崩解释放第69页
    3.9 微胶囊产品的检测结果第69-76页
        3.9.1 微胶囊产品的外观第69-70页
        3.9.2 透射电镜下微胶囊产品内部Lb.paracasei HD1.7的结构第70-71页
        3.9.3 红外光谱仪对微胶囊的检测结果第71-73页
        3.9.4 微胶囊粒径分布的测定结果第73-74页
        3.9.5 微胶囊产品的贮存实验第74-76页
第4章 讨论第76-81页
    4.1 壁材的选择第76页
    4.2 真空冷冻干燥技术第76-77页
    4.3 保护剂对Lb.paracasei HD1.7冻干的保护效果第77-78页
    4.4 益生元对Lb.paracasei HD1.7的增殖效果第78页
    4.5 微胶囊化过程中诸多因素对包埋效果的影响第78-79页
    4.6 极端胃肠环境对微胶囊菌株活力的影响第79-80页
    4.7 微胶囊产品的检测第80-81页
第5章 结论第81-85页
    5.1 保护剂对Lb.paracasei HD1.7冻干的保护效果第81页
    5.2 益生元对Lb.paracasei HD1.7的增殖效果第81-82页
    5.3 微胶囊化过程中制备工艺的优化第82页
    5.4 极端胃肠环境对微胶囊菌株活力的影响第82-84页
    5.5 微胶囊产品的检测第84页
    5.6 试验的创新点第84-85页
参考文献第85-92页
致谢第92-93页

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