| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略表 | 第11-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-23页 |
| 1.1 真菌毒素的简介 | 第12-16页 |
| 1.1.1 赭曲霉毒素 | 第12-13页 |
| 1.1.2 黄曲霉毒素 | 第13-15页 |
| 1.1.3 伏马毒素 | 第15-16页 |
| 1.2 真菌毒素的分析方法 | 第16-17页 |
| 1.2.1 色谱法 | 第16页 |
| 1.2.2 生物传感器技术 | 第16页 |
| 1.2.3 免疫分析法 | 第16-17页 |
| 1.3 生物芯片技术 | 第17-19页 |
| 1.3.1 生物芯片技术简介 | 第17页 |
| 1.3.2 蛋白质芯片的概念 | 第17页 |
| 1.3.3 蛋白质芯片的载体 | 第17-18页 |
| 1.3.4 蛋白质芯片信号的检测方法 | 第18页 |
| 1.3.5 蛋白质芯片在食品安全方面的应用 | 第18-19页 |
| 1.4 多孔硅材料 | 第19-22页 |
| 1.4.1 多孔硅的制备方法 | 第19-20页 |
| 1.4.1.1 电化学腐蚀法 | 第19-20页 |
| 1.4.1.2 光化学腐蚀法 | 第20页 |
| 1.4.1.3 水热腐蚀法 | 第20页 |
| 1.4.2 多孔硅的应用 | 第20-22页 |
| 1.4.2.1 光学及光电子器件 | 第20-21页 |
| 1.4.2.2 传感器件 | 第21-22页 |
| 1.5 本课题研究内容与意义 | 第22-23页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第22页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第22-23页 |
| 第2章 多孔硅的制备及表面处理和修饰 | 第23-31页 |
| 2.1 引言 | 第23-24页 |
| 2.2 实验材料和仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.1 主要试剂和材料 | 第24页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第24页 |
| 2.2.3 主要溶液的配制 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.3.1 硅片前处理 | 第25页 |
| 2.3.2 多孔硅刻蚀电流波形的选择 | 第25-26页 |
| 2.3.3 TiO_2纳米层对多孔硅信号的影响 | 第26页 |
| 2.3.4 多孔硅表面不同修饰方法 | 第26-27页 |
| 2.3.4.1 修饰醛基 | 第26页 |
| 2.3.4.2 修饰羧基 | 第26-27页 |
| 2.3.4.3 修饰环氧基 | 第27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-30页 |
| 2.4.1 多孔硅刻蚀条件的确定 | 第27-28页 |
| 2.4.2 TiO_2纳米层对多孔硅信号的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.3 多孔硅表面不同修饰方法 | 第29-30页 |
| 2.4.3.1 修饰醛基 | 第29页 |
| 2.4.3.2 修饰羧基 | 第29页 |
| 2.4.3.3 修饰环氧基 | 第29-30页 |
| 2.5 本章小结 | 第30-31页 |
| 第3章 TiO_2-PSi蛋白质芯片分别检测谷物中三种真菌毒素 | 第31-50页 |
| 3.1 引言 | 第31-32页 |
| 3.2 实验材料和仪器 | 第32-33页 |
| 3.2.1 主要试剂和材料 | 第32页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第32-33页 |
| 3.2.3 主要溶液的配制 | 第33页 |
| 3.3 实验条件的优化 | 第33-35页 |
| 3.3.1 分别优化三种真菌毒素的完全抗原浓度 | 第33-34页 |
| 3.3.1.1 OTA-BSA浓度的优化 | 第33-34页 |
| 3.3.1.2 AFB_1-BSA浓度的优化 | 第34页 |
| 3.3.1.3 FB_1-BSA浓度的优化 | 第34页 |
| 3.3.2 分别优化三种真菌毒素的一抗浓度 | 第34页 |
| 3.3.2.1 OTA-Ab浓度的优化 | 第34页 |
| 3.3.2.2 AFB_1-Ab浓度的优化 | 第34页 |
| 3.3.2.3 FB_1-Ab浓度的优化 | 第34页 |
| 3.3.3 分别优化三种真菌毒素的二抗浓度 | 第34-35页 |
| 3.3.3.1 OTA二抗浓度的优化 | 第34页 |
| 3.3.3.2 AFB_1二抗浓度的优化 | 第34-35页 |
| 3.3.3.3 FB_1二抗浓度的优化 | 第35页 |
| 3.4 分别检测谷物中的三种真菌毒素 | 第35-37页 |
| 3.4.1 分别制作三种真菌毒素的标准曲线 | 第35-36页 |
| 3.4.1.1 OTA标准曲线的制作 | 第35-36页 |
| 3.4.1.2 AFB_1标准曲线的制作 | 第36页 |
| 3.4.1.3 FB_1标准曲线的制作 | 第36页 |
| 3.4.2 特异性分析 | 第36页 |
| 3.4.3 谷物中OTA加标回收率的测定 | 第36-37页 |
| 3.4.3.1 样品前处理 | 第36页 |
| 3.4.3.2 样品提取 | 第36页 |
| 3.4.3.3 回收率测定 | 第36-37页 |
| 3.4.3.4 ELISA方法测定谷物中OTA加标回收率 | 第37页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第37-49页 |
| 3.5.1 优化条件的确定 | 第37-42页 |
| 3.5.1.1 分别优化三种真菌毒素完全抗原浓度的结果 | 第37-39页 |
| 3.5.1.2 分别优化三种真菌毒素一抗浓度的结果 | 第39-40页 |
| 3.5.1.3 分别优化三种真菌毒素荧光二抗浓度的结果 | 第40-42页 |
| 3.5.2 分别制作三种真菌毒素的标准曲线 | 第42-45页 |
| 3.5.2.1 OTA标准曲线的制作 | 第42-43页 |
| 3.5.2.2 AFB_1标准曲线的制作 | 第43-44页 |
| 3.5.2.3 FB_1标准曲线的制作 | 第44-45页 |
| 3.5.3 OTA检测的特异性分析 | 第45-46页 |
| 3.5.4 谷物中OTA加标回收率的测定 | 第46-49页 |
| 3.5.4.1 本法测定的加标回收率结果 | 第46-47页 |
| 3.5.4.2 ELISA方法测定的加标回收率的结果 | 第47-49页 |
| 3.6 本章小结 | 第49-50页 |
| 第4章 TiO_2-PSi蛋白质芯片同时检测谷物中多元真菌毒素 | 第50-65页 |
| 4.1 引言 | 第50-51页 |
| 4.2 实验材料和仪器 | 第51-52页 |
| 4.2.1 主要试剂和材料 | 第51页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第51-52页 |
| 4.2.3 主要溶液的配制 | 第52页 |
| 4.3 同时检测谷物中的多元真菌毒素 | 第52-56页 |
| 4.3.1 同时检测多元真菌毒素标准曲线的制作 | 第52-54页 |
| 4.3.1.1 多元真菌毒素和多抗体混合反应体系 | 第52-53页 |
| 4.3.1.2 多元真菌毒素分别和三种抗体混合反应体系 | 第53-54页 |
| 4.3.2 多重特异性分析 | 第54-55页 |
| 4.3.3 谷物中多元真菌毒素加标回收率的测定 | 第55-56页 |
| 4.3.3.1 样品前处理 | 第55页 |
| 4.3.3.2 样品提取 | 第55页 |
| 4.3.3.3 回收率测定 | 第55页 |
| 4.3.3.4 ELISA方法测定回收率 | 第55-56页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第56-64页 |
| 4.4.1 同时检测多元真菌毒素标准曲线的制作 | 第56-59页 |
| 4.4.1.1 多元真菌毒素和多抗体混合反应体系 | 第56-57页 |
| 4.4.1.2 多元真菌毒素分别和三种抗体混合反应体系 | 第57-59页 |
| 4.4.2 多重特异性分析 | 第59-60页 |
| 4.4.3 谷物中多元真菌毒素加标回收率的测定 | 第60-64页 |
| 4.4.3.1 本法测定的多元真菌毒素加标回收率结果 | 第60页 |
| 4.4.3.2 ELISA方法测定的多元真菌毒素加标回收率结果 | 第60-64页 |
| 4.5 本章小结 | 第64-65页 |
| 全文总结 | 第65-67页 |
| 展望 | 第67-68页 |
| 附录 | 第68-74页 |
| 参考文献 | 第74-83页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
