| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 谷朊粉简介 | 第9-10页 |
| 1.1.1 谷朊粉的组成及结构 | 第9页 |
| 1.1.3 国内外谷朊粉产品的开发利用现状 | 第9-10页 |
| 1.2 生物活性肽 | 第10-14页 |
| 1.2.1 抗氧化活性肽 | 第11-12页 |
| 1.2.2 ACE抑制肽 | 第12-14页 |
| 1.3 本课题的立题背景及研究内容 | 第14-16页 |
| 1.3.2 本课题的研究内容 | 第15-16页 |
| 第二章 不同酶解条件下谷朊粉酶解条件的优化 | 第16-39页 |
| 2.1 引言 | 第16-17页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第17-19页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第17页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第17-18页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第18-19页 |
| 2.2.4 统计学分析 | 第19页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第19-37页 |
| 2.3.1 谷朊粉基本成分分析 | 第19-20页 |
| 2.3.2 酶解条件的单因素实验 | 第20-33页 |
| 2.3.3 酶解条件的正交优化实验 | 第33-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-39页 |
| 第三章 酶解物抗氧化活性测定及抗氧化肽的分离、鉴定 | 第39-52页 |
| 3.1 引言 | 第39-40页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第40-42页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第40页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第40-41页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第41-42页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第42-52页 |
| 3.3.1 谷朊粉酶解物的制备及其抗氧化活性 | 第42-44页 |
| 3.3.2 高效液相色谱 | 第44-47页 |
| 3.3.3 超滤 | 第47页 |
| 3.3.4 葡聚糖凝胶过滤 | 第47-48页 |
| 3.3.5 反相高效液相色谱（RP-HPLC） | 第48-49页 |
| 3.3.6 ESI-TOF-MS | 第49-50页 |
| 3.3.7 本章小结 | 第50-52页 |
| 第四章 酶解物ACE抑制肽的分离、鉴定 | 第52-63页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第52-55页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第52-53页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第53页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第55-63页 |
| 4.3.0 谷朊粉酶解物的制备 | 第55-56页 |
| 4.3.1 高效液相色谱 | 第56-58页 |
| 4.3.2 超滤 | 第58页 |
| 4.3.3 葡聚糖凝胶过滤 | 第58-59页 |
| 4.3.4 反相高效液相（RP-HPLC） | 第59-60页 |
| 4.3.5 ACE抑制肽的鉴定 | 第60-61页 |
| 4.3.6 本章小结 | 第61-63页 |
| 第五章 结论与展望 | 第63-65页 |
| 5.1 主要结论 | 第63-64页 |
| 5.2 创新点 | 第64页 |
| 5.3 展望 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 附录 | 第74页 |