| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 主要符号表 | 第12-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-21页 |
| 1.1 鲍的概述 | 第13-14页 |
| 1.1.1 鲍的养殖现状 | 第13-14页 |
| 1.1.2 鲍的营养 | 第14页 |
| 1.1.3 鲍脏器开发应用现状 | 第14页 |
| 1.2 多糖概述 | 第14-19页 |
| 1.2.1 多糖的提取 | 第15页 |
| 1.2.2 多糖的分离纯化 | 第15-17页 |
| 1.2.3 多糖的结构表征方法 | 第17页 |
| 1.2.4 多糖功能活性研究进展 | 第17-19页 |
| 1.3 课题的立题依据及主要内容 | 第19-21页 |
| 第2章 鲍内脏多糖提取工艺优化 | 第21-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 原料 | 第21页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第22页 |
| 2.1.4 主要溶液配制 | 第22页 |
| 2.2 实验方法与内容 | 第22-26页 |
| 2.2.1 鲍内脏酶解工艺流程 | 第22页 |
| 2.2.2 鲍内脏常规理化指标的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.3 多糖含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.4 蛋白质水解度的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.5 多糖酶解液清除 1,1-二苯基-苦肼基自由基（DPPH·）的测定 | 第24页 |
| 2.2.6 初次酶解蛋白酶种类的选择 | 第24-25页 |
| 2.2.7 酶解法提取鲍内脏多糖的单因素实验 | 第25页 |
| 2.2.8 酶解法提取鲍内脏多糖的响应面实验 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-35页 |
| 2.3.1 鲍内脏粉基本成分分析 | 第26页 |
| 2.3.2 蛋白酶种类的选择和酶解时间的影响 | 第26-28页 |
| 2.3.3 酶解法提取鲍内脏多糖的单因素实验 | 第28-29页 |
| 2.3.4 酶解法提取鲍内脏多糖的响应面优化 | 第29-32页 |
| 2.3.5 超滤对鲍内脏酶解液中多糖组分的截留效果 | 第32-34页 |
| 2.3.6 二次酶解脱蛋白 | 第34-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-37页 |
| 第3章 鲍内脏多糖的纯化与结构分析 | 第37-53页 |
| 3.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 3.1.1 原料 | 第37页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第38页 |
| 3.2 实验方法与内容 | 第38-42页 |
| 3.2.1 DEAE Sepharose CL-6B阴离子交换柱层析 | 第39-40页 |
| 3.2.2 Sephacryl S-300HR纯化鲍内脏多糖 | 第40页 |
| 3.2.3 鲍内脏多糖纯化样品的化学组成 | 第40-41页 |
| 3.2.4 鲍内脏多糖的单糖组成分析 | 第41-42页 |
| 3.2.5 鲍内脏多糖纯化组分的分子量及构象分析 | 第42页 |
| 3.2.6 鲍内脏多糖纯化组分的红外光谱分析 | 第42页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第42-52页 |
| 3.3.1 离子交换柱层析纯化鲍内脏粗多糖 | 第42-43页 |
| 3.3.2 Sephacryl S-300HR柱层析纯化鲍内脏多糖 | 第43-44页 |
| 3.3.3 多糖组分基本成分分析 | 第44-45页 |
| 3.3.4 多糖组分的单糖组成分析 | 第45-47页 |
| 3.3.5 多糖组分的分子量及分子尺寸测定 | 第47-49页 |
| 3.3.6 多糖组分的分子构象 | 第49-50页 |
| 3.3.7 红外光谱分析 | 第50-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第4章 鲍内脏多糖的抗氧化活性研究 | 第53-68页 |
| 4.1 实验材料 | 第53-54页 |
| 4.1.1 原料 | 第53页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第53-54页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第54页 |
| 4.1.4 主要溶液配制 | 第54页 |
| 4.2 实验方法与内容 | 第54-56页 |
| 4.2.1 鲍内脏多糖清除 1,1-二苯基-苦肼基自由基（DPPH·）的测定 | 第54页 |
| 4.2.2 鲍内脏多糖清除羟自由基（·OH）的测定 | 第54-55页 |
| 4.2.3 鲍内脏多糖清除超氧阴离子（O-_2·）的测定 | 第55页 |
| 4.2.4 肝细胞的培养 | 第55页 |
| 4.2.5 鲍内脏多糖对LO2细胞生长情况测定 | 第55页 |
| 4.2.6 LO2细胞氧化损伤模型的建立 | 第55-56页 |
| 4.2.7 鲍内脏多糖对H2O2诱导LO2细胞损伤的保护作用 | 第56页 |
| 4.2.8 抗氧化指标的测定 | 第56页 |
| 4.2.9 统计分析 | 第56页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第56-67页 |
| 4.3.1 鲍内脏多糖清除 1,1-二苯基-苦肼基自由基（DPPH·）的活性 | 第56-58页 |
| 4.3.2 鲍内脏多糖清除羟自由基（·OH）的活性 | 第58-59页 |
| 4.3.3 鲍内脏多糖清除超氧阴离子自由基（O-_2·）活性 | 第59-60页 |
| 4.3.4 鲍内脏多糖对LO2细胞生长的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.5 鲍内脏多糖对H_2O_2损伤LO2细胞的保护作用 | 第61-63页 |
| 4.3.6 鲍内脏多糖对细胞上清中LDH活力的影响 | 第63-64页 |
| 4.3.7 鲍内脏多糖对细胞内GSH-Px、CAT、SOD活力的的影响 | 第64-65页 |
| 4.3.8 鲍内脏多糖对MDA生成量的影响 | 第65-67页 |
| 4.4 本章小结 | 第67-68页 |
| 第5章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 5.1 结论 | 第68-69页 |
| 5.2 存在的问题与展望 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第76页 |
