| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词 | 第8-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-25页 |
| 1.1 小麦苗功能组分及应用研究现状 | 第11-13页 |
| 1.1.1 小麦苗中营养成分 | 第11-12页 |
| 1.1.2 小麦苗中抗氧化组分 | 第12页 |
| 1.1.3 小麦苗的应用研究 | 第12-13页 |
| 1.2 超氧化物歧化酶研究现状 | 第13-15页 |
| 1.2.1 SOD种类及分布 | 第13页 |
| 1.2.2 SOD的理化性质 | 第13-14页 |
| 1.2.3 SOD生理功能 | 第14页 |
| 1.2.4 SOD活性影响因素 | 第14页 |
| 1.2.5 SOD应用研究 | 第14-15页 |
| 1.3 超氧化物歧化酶分离纯化技术 | 第15-19页 |
| 1.3.1 SOD分离纯化方法 | 第15-18页 |
| 1.3.2 不同来源SOD分离纯化 | 第18页 |
| 1.3.3 SOD活性测定方法 | 第18-19页 |
| 1.4 超氧化物歧化酶抗氧化活性研究 | 第19-23页 |
| 1.4.1 体外抗氧化活性研究 | 第20-22页 |
| 1.4.2 体内抗氧化活性研究 | 第22-23页 |
| 1.5 立题意义及研究内容 | 第23-25页 |
| 1.5.1 立题意义 | 第23-24页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-33页 |
| 2.1 材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第25页 |
| 2.1.2 药品试剂 | 第25页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第25-26页 |
| 2.2 研究方法 | 第26-33页 |
| 2.2.1 小麦苗超氧化物歧化酶提取条件的优化研究 | 第26-27页 |
| 2.2.2 小麦苗超氧化物歧化酶的纯化条件研究 | 第27-30页 |
| 2.2.3 小麦苗超氧化物歧化酶的抗氧化活性研究 | 第30-33页 |
| 3 结果分析 | 第33-53页 |
| 3.1 小麦苗超氧化物歧化酶提取条件的优化研究 | 第33-40页 |
| 3.1.1 磷酸盐缓冲液法提取小麦苗SOD的主要影响因素分析 | 第33-35页 |
| 3.1.2 RSA优化超氧化物歧化酶提取工艺 | 第35-37页 |
| 3.1.3 因素间的交互影响 | 第37-40页 |
| 3.1.4 最佳提取工艺的确定 | 第40页 |
| 3.2 小麦苗超氧化物歧化酶的纯化条件研究 | 第40-47页 |
| 3.2.1 DEAE-52纤维素柱层析 | 第40-41页 |
| 3.2.2 SephadexG-75分子筛柱层析 | 第41页 |
| 3.2.3 SOD纯化结果 | 第41页 |
| 3.2.4 麦苗水分含量的测定 | 第41-42页 |
| 3.2.5 SOD活性的测定影响因素 | 第42-43页 |
| 3.2.6 蛋白质含量的测定 | 第43-44页 |
| 3.2.7 小麦苗SOD的基本性质分析 | 第44-47页 |
| 3.3 小麦苗超氧化物歧化酶的抗氧化活性研究 | 第47-53页 |
| 3.3.1 体外抗氧化活性研究 | 第47-49页 |
| 3.3.2 体内抗氧化活性研究 | 第49-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| 4.1 SOD酶活测定的影响因素 | 第53页 |
| 4.2 纯化方法的选择 | 第53页 |
| 4.3 蛋白质含量测定方法的选择 | 第53-54页 |
| 4.4 抗氧化活性研究 | 第54-55页 |
| 4.4.1 体外抗氧化活性研究 | 第54页 |
| 4.4.2 体内抗氧化活性研究 | 第54-55页 |
| 4.5 小麦苗SOD的基本理化性质 | 第55页 |
| 4.6 实验误差的讨论 | 第55-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 附录：攻读硕士学位论文期间发表的论文 | 第64页 |