摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
第1章 引言 | 第11-21页 |
1.1 褐藻的概述 | 第12-14页 |
1.1.1 海藻的资源分类 | 第12页 |
1.1.2 海带的介绍 | 第12页 |
1.1.3 海带中的生物活性物质 | 第12-13页 |
1.1.4 海带的开发利用现状 | 第13-14页 |
1.2 岩藻黄素的研究进展 | 第14-17页 |
1.2.1 岩藻黄质的分布 | 第14页 |
1.2.2 岩藻黄素的结构和性质 | 第14-15页 |
1.2.3 岩藻黄素的生物活性 | 第15-16页 |
1.2.4 岩藻黄素的提取 | 第16-17页 |
1.2.5 岩藻黄素的纯化 | 第17页 |
1.3 褐藻多酚的研究进展 | 第17-19页 |
1.3.1 褐藻多酚的分类 | 第17-18页 |
1.3.2 多酚的提取 | 第18页 |
1.3.3 多酚的分离纯化 | 第18-19页 |
1.3.4 多酚的生物活性 | 第19页 |
1.4 研究的背景、目的、意义和主要研究内容 | 第19-21页 |
第2章 岩藻黄素与褐藻多酚的联合提取 | 第21-35页 |
2.1 实验材料 | 第22-23页 |
2.1.1 实验原料 | 第22页 |
2.1.2 实验试剂 | 第22页 |
2.1.3 主要实验仪器 | 第22-23页 |
2.2 实验方法 | 第23-26页 |
2.2.1 海带岩藻黄素与褐藻多酚提取工艺 | 第23页 |
2.2.2 酶法联合提取岩藻黄素与褐藻多酚的工艺优化 | 第23-25页 |
2.2.3 褐藻多酚含量的测定 | 第25-26页 |
2.2.4 岩藻黄素含量的测定 | 第26页 |
2.2.5 数据分析 | 第26页 |
2.3 结果与分析 | 第26-33页 |
2.3.1 多酚含量标准曲线 | 第26-27页 |
2.3.2 加酶量对褐藻多酚、岩藻黄素提取率的影响 | 第27-28页 |
2.3.3 酶解过程pH值对褐藻多酚、岩藻黄素提取率的影响 | 第28页 |
2.3.4 酶解温度对褐藻多酚、岩藻黄素提取率的影响 | 第28-29页 |
2.3.5 酶解时间对褐藻多酚、岩藻黄素提取率的影响 | 第29-30页 |
2.3.6 不同酶解方法的提取效果的比较 | 第30-31页 |
2.3.7 联合提取褐藻多酚、岩藻黄素最佳工艺条件的确定 | 第31-33页 |
2.4 讨论 | 第33-34页 |
2.5 本章小结 | 第34-35页 |
第3章 褐藻多酚纯化工艺的研究 | 第35-56页 |
3.1 实验材料 | 第36-37页 |
3.1.1 实验原料 | 第36页 |
3.1.2 主要药品及试剂 | 第36页 |
3.1.3 实验仪器 | 第36-37页 |
3.2 实验方法 | 第37-41页 |
3.2.1 多酚粗提物的制备 | 第37页 |
3.2.2 总酚的测定 | 第37页 |
3.2.3 高效液相色谱法测定多酚 | 第37页 |
3.2.4 液质联用法鉴定多酚成分 | 第37-38页 |
3.2.5 不同极性的有机溶剂对多酚粗提物纯化效果的研究 | 第38-39页 |
3.2.6 大孔树脂分离纯化萃取水相 | 第39-40页 |
3.2.7 硅胶柱层析法纯化多酚乙酸乙酯萃取相 | 第40-41页 |
3.2.8 多酚抗氧化活性研究 | 第41页 |
3.3 结果与分析 | 第41-55页 |
3.3.1 不同极性有机溶剂萃取对多酚纯度的影响 | 第41-43页 |
3.3.2 大孔树脂分离纯化多酚 | 第43-45页 |
3.3.3 高效液相色谱法测定多酚样品 | 第45-47页 |
3.3.4 液质联用鉴定乙酸乙酯萃取物成分 | 第47-48页 |
3.3.5 硅胶柱层析法分离纯化多酚 | 第48-53页 |
3.3.6 不同极性有机溶剂萃取多酚的抗氧化效果比较 | 第53-54页 |
3.3.7 XAD-7大孔树脂纯化前后抗氧化效果比较 | 第54-55页 |
3.4 本章小结 | 第55-56页 |
第4章 结论与展望 | 第56-59页 |
4.1 主要结论 | 第56-57页 |
4.1.1 海带中岩藻黄素与褐藻多酚的酶法联合提取工艺研究 | 第56页 |
4.1.2 褐藻多酚的分离纯化及成分鉴定 | 第56-57页 |
4.1.3 褐藻多酚抗氧化活性的研究 | 第57页 |
4.2 创新点 | 第57-58页 |
4.3 展望 | 第58-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-66页 |
在学期间发表的学术论文 | 第66页 |