摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
1 绪论 | 第11-19页 |
1.1 水产品保活技术 | 第11-14页 |
1.1.1 国内外水产品保活研究历史 | 第11-12页 |
1.1.2 常见水产品保活方法 | 第12-14页 |
1.2 水产动物在胁迫条件下的生理生化变化 | 第14-15页 |
1.3 蛋白质组学及其在水产动物研究中的应用 | 第15-18页 |
1.3.1 蛋白质组学的形成及发展 | 第15-16页 |
1.3.2 蛋白质组学的主要技术 | 第16-17页 |
1.3.3 蛋白质组学在水产动物应激研究中的应用 | 第17-18页 |
1.4 立题背景及主要研究内容 | 第18-19页 |
2 响应面法优化低温与二氧化碳联合胁迫凡纳滨对虾无水保活条件 | 第19-26页 |
2.1 材料与方法 | 第19-20页 |
2.1.1 材料与处理 | 第19页 |
2.1.2 仪器与设备 | 第19页 |
2.1.3 实验方法 | 第19-20页 |
2.1.3.1 响应面法优化试验 | 第20页 |
2.1.3.2 统计分析 | 第20页 |
2.2 结果与分析 | 第20-24页 |
2.2.1 响应面试验结果及方差分析 | 第20-22页 |
2.2.2 响应曲面图分析 | 第22-24页 |
2.2.3 验证试验结果 | 第24页 |
2.3 本章小结 | 第24-26页 |
3 低温与二氧化碳联合胁迫凡纳滨对虾无水保活过程中呼吸代谢酶与相关免疫指标的变化规律 | 第26-32页 |
3.1 材料与方法 | 第26-27页 |
3.1.0 材料与试剂 | 第26页 |
3.1.1 仪器与设备 | 第26页 |
3.1.2 试验方法 | 第26-27页 |
3.1.3 数据统计与分析 | 第27页 |
3.2 结果与分析 | 第27-31页 |
3.2.1 凡纳滨对虾无水保活过程中Glu和LD含量的变化 | 第27-28页 |
3.2.2 凡纳滨对虾无水保活过程中HK、PFK和PK活力的变化 | 第28-29页 |
3.2.3 凡纳滨对虾无水保活过程中SDH和LDH活力的变化 | 第29-30页 |
3.2.4 凡纳滨对虾无水保活过程中THC、SOD和POD活力的变化 | 第30-31页 |
3.3 本章小结 | 第31-32页 |
4 低温与二氧化碳联合胁迫凡纳滨对虾无水保活过程中的差异蛋白质组学研究 | 第32-44页 |
4.1 材料与方法 | 第32-35页 |
4.1.1 材料与试剂 | 第32页 |
4.1.2 仪器与设备 | 第32-33页 |
4.1.3 试验方法 | 第33-34页 |
4.1.4 蛋白质鉴定及相对定量 | 第34-35页 |
4.1.5 生物信息学分析 | 第35页 |
4.2 实验结果与分析 | 第35-42页 |
4.2.1 生物信息学分析 | 第35-39页 |
4.2.2 与糖原分解相关的酶 | 第39页 |
4.2.3 与糖酵解相关的蛋白质 | 第39-41页 |
4.2.4 与氧化磷酸化相关的蛋白质 | 第41页 |
4.2.5 与ATP合成和分解相关的蛋白质 | 第41-42页 |
4.2.6 与应激相关的蛋白 | 第42页 |
4.3 本章小结 | 第42-44页 |
5 结论与展望 | 第44-46页 |
5.1 结论 | 第44-45页 |
5.2 展望 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
个人简介 | 第58-59页 |
导师简介 | 第59页 |