| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-12页 |
| 1 绪论 | 第12-23页 |
| ·稠李属植物的研究概况 | 第12-13页 |
| ·稠李属植物简介 | 第12页 |
| ·稠李属植物的开发及应用价值 | 第12-13页 |
| ·稠李属果实花色苷的研究现状 | 第13页 |
| ·稠李属果实花色苷的理化性质研究 | 第13页 |
| ·稠李属果实花色苷的提取及含量测定 | 第13页 |
| ·花色苷的研究现状 | 第13-16页 |
| ·花色苷的结构与理化性质 | 第14页 |
| ·花色苷的定量分析与提取纯化 | 第14-15页 |
| ·花色苷的定量分析 | 第14页 |
| ·提取及纯化的方法 | 第14-15页 |
| ·花色苷的生物活性 | 第15-16页 |
| ·抗氧化以及清除自由基功能 | 第15页 |
| ·抗突变、抗癌的功能 | 第15-16页 |
| ·抗炎症、抑菌的功能 | 第16页 |
| ·其他的生理功能 | 第16页 |
| ·抗氧化作用概述 | 第16-20页 |
| ·自由基的产生 | 第16-17页 |
| ·自由基的生理功能及对机体的损伤 | 第17页 |
| ·抗氧化的途径及机制 | 第17-20页 |
| ·抗氧化的途径 | 第17-19页 |
| ·抗氧化的机制 | 第19-20页 |
| ·稠李属果实花色苷研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| ·稠李属果实花色苷研究内容及方法 | 第21-23页 |
| 2 稠李属果实花色苷体外抗氧化对比研究 | 第23-34页 |
| ·引言 | 第23页 |
| ·试验材料及仪器 | 第23-24页 |
| ·试验材料与试剂 | 第23-24页 |
| ·试验仪器与设备 | 第24页 |
| ·试验方法 | 第24-27页 |
| ·花色苷的提取纯化 | 第24页 |
| ·扫描最大吸收波长 | 第24-25页 |
| ·花色苷含量测定 | 第25页 |
| ·花色苷体外抗氧化活性对比 | 第25-27页 |
| ·花色苷清除·OH自由基能力的测定 | 第25页 |
| ·花色苷清除O_2~-·自由基能力的测定 | 第25-26页 |
| ·花色苷清除H_2O_2能力的测定 | 第26页 |
| ·花色苷清除ABTS自由基的测定 | 第26页 |
| ·花色苷清除DPPH自由基活性的测定 | 第26页 |
| ·花色苷总还原能力的测定 | 第26-27页 |
| ·数据分析 | 第27页 |
| ·试验结果 | 第27-32页 |
| ·三种果实花色苷溶液的吸收光谱 | 第27-28页 |
| ·三种果实花色苷含量的测定 | 第28页 |
| ·三种果实花色苷体外抗氧化活性对比 | 第28-32页 |
| ·清除·OH自由基的测定结果 | 第28-29页 |
| ·清除O_2~-·自由基的测定结果 | 第29页 |
| ·花色苷清除H_2O_2能力的测定 | 第29-30页 |
| ·清除ABTS的测定结果 | 第30-31页 |
| ·清除DPPH的测定结果 | 第31-32页 |
| ·还原力的测定结果 | 第32页 |
| ·结论与分析 | 第32-34页 |
| 3 稠李属果实花色苷对HepG2细胞的抑制作用 | 第34-46页 |
| ·引言 | 第34页 |
| ·试验材料及仪器 | 第34-35页 |
| ·试验材料与试剂 | 第34页 |
| ·试验仪器与设备 | 第34-35页 |
| ·溶液的配制 | 第35页 |
| ·花色苷的制备 | 第35页 |
| ·细胞培养液的配制 | 第35页 |
| ·PBS缓冲液的配制 | 第35页 |
| ·MTT的配制 | 第35页 |
| ·试验方法 | 第35-36页 |
| ·细胞的复苏与培养 | 第35页 |
| ·HepG2细胞的生长曲线的测定 | 第35-36页 |
| ·HepG2细胞生长抑制曲线 | 第36页 |
| ·MTT法检测HepG2细胞生长抑制率 | 第36页 |
| ·细胞形态观察 | 第36页 |
| ·数据分析 | 第36页 |
| ·试验结果 | 第36-44页 |
| ·细胞的生长曲线的测定结果 | 第36-37页 |
| ·胎盘蓝染色测定结果 | 第37-39页 |
| ·稠李花色苷对HpG2细胞生长.曲线的影响 | 第37页 |
| ·山桃稠李花色苷对HpG2细胞生长曲线的影响 | 第37-38页 |
| ·紫叶稠李花色苷对HpG2细胞生长曲线的影响 | 第38-39页 |
| ·MTT法检测HepG2细胞生长抑制率 | 第39-42页 |
| ·稠李果实花色苷对HepG2细胞抑制率 | 第39页 |
| ·山桃稠李果实花色苷对HepG2细胞抑制率 | 第39-40页 |
| ·紫叶稠李果实花色苷对HepG2细胞抑制率 | 第40-41页 |
| ·稠李属三种果实花色苷对HepG2细胞抑制作用比较 | 第41-42页 |
| ·倒置显微镜观察细胞形态 | 第42-44页 |
| ·稠李果实花色苷作用HepG2细胞的形态观察 | 第42页 |
| ·山桃稠李果实花色苷作用HepG2细胞的形态观察 | 第42-43页 |
| ·紫叶稠李果实花色苷作用HepG2细胞的形态观察 | 第43-44页 |
| ·结论与分析 | 第44-46页 |
| 4 稠李属果实花色苷对HepG2细胞抗氧化系统的影响 | 第46-58页 |
| ·引言 | 第46页 |
| ·试验材料及仪器 | 第46-47页 |
| ·试验材料与试剂 | 第46-47页 |
| ·试验仪器与设备 | 第47页 |
| ·试验方法 | 第47-48页 |
| ·花色苷的制备 | 第47页 |
| ·试剂的配制 | 第47页 |
| ·细胞内抗氧化酶活性检测 | 第47页 |
| ·细胞内抗氧化物含量测定 | 第47页 |
| ·细胞内氧化酶、NOS活性检测 | 第47页 |
| ·细胞内ROS含量测定 | 第47-48页 |
| ·统计学处理 | 第48页 |
| ·试验结果 | 第48-55页 |
| ·细胞内GSH-ST活性检测 | 第48页 |
| ·细胞内T-SOD活性检测 | 第48-49页 |
| ·细胞内GSH-Px活性检测 | 第49-50页 |
| ·细胞内CAT活性检测 | 第50页 |
| ·细胞内GSH含量检测 | 第50页 |
| ·细胞内XOD活性检测 | 第50-51页 |
| ·细胞内NOS活性检测 | 第51-53页 |
| ·细胞内T-NOS活性检测 | 第51-52页 |
| ·细胞内i-NOS活性检测 | 第52-53页 |
| ·细胞内c-NOS活性检测 | 第53页 |
| ·细胞内MDA含量检测 | 第53-54页 |
| ·细胞内ROS含量检测 | 第54-55页 |
| ·结论与分析 | 第55-58页 |
| 5 稠李属果实花色苷对HepG2细胞PI3K-Nrf2/Keap1 | 第58-67页 |
| ·引言 | 第58页 |
| ·试验材料及仪器 | 第58-59页 |
| ·试验材料与试剂 | 第58-59页 |
| ·试验仪器与设备 | 第59页 |
| ·试验方法 | 第59-62页 |
| ·花色苷的制备 | 第59页 |
| ·细胞的培养 | 第59页 |
| ·人磷酸肌醇3激酶(PI3K激酶)活力测定 | 第59页 |
| ·三种果实花色苷对Nrf2/Keap1的基因表达的影响 | 第59-62页 |
| ·引物序列的设计与合成 | 第59-60页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第60-61页 |
| ·逆转录合成cDNA | 第61页 |
| ·PCR扩增 | 第61-62页 |
| ·统计学处理 | 第62页 |
| ·试验结果 | 第62-65页 |
| ·人磷酸肌醇3激酶(PI3K)活力测定结果 | 第62页 |
| ·GSTP1在HepG2细胞中的表达 | 第62-63页 |
| ·Nrf2在HepG2细胞中的表达 | 第63-64页 |
| ·Keap1在HepG2细胞中的表达 | 第64-65页 |
| ·结论与分析 | 第65-67页 |
| 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
