| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-34页 |
| 1.1 细菌的 VBNC 状态 | 第13-21页 |
| 1.1.1 细菌 VBNC 状态的形成机理 | 第13-15页 |
| 1.1.2 VBNC 状态细菌的细胞特性 | 第15-16页 |
| 1.1.3 细菌 VBNC 状态的诱导 | 第16-18页 |
| 1.1.4 VBNC 状态细菌的检测方法 | 第18-21页 |
| 1.2 单核细胞增生李斯特菌的研究进展 | 第21-26页 |
| 1.2.1 单核细胞增生李斯特菌的生物学特征 | 第21-22页 |
| 1.2.2 单增李斯特菌的食源性危害 | 第22-23页 |
| 1.2.3 单增李斯特菌活菌的检测方法 | 第23-25页 |
| 1.2.4 VBNC 状态的单增李斯特菌 | 第25-26页 |
| 1.3 肉及肉制品中单增李斯特菌的研究进展 | 第26-28页 |
| 1.3.1 单增李斯特菌对鲜肉污染的情况概论 | 第26-27页 |
| 1.3.2 对肉类中单增李斯特菌的检测研究概论 | 第27-28页 |
| 1.4 PMA-qPCR 技术的研究 | 第28-30页 |
| 1.4.1 EMA/PMA-qPCR 技术原理 | 第28-29页 |
| 1.4.2 PMA-qPCR 技术应用现状 | 第29-30页 |
| 1.5 本课题研究的意义和内容 | 第30-34页 |
| 1.5.1 立项依据与意义 | 第30-32页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第32-34页 |
| 第二章 VBNC 状态单增李斯特菌的诱导与检测 | 第34-45页 |
| 2.1 引言 | 第34页 |
| 2.2 材料与方法 | 第34-38页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第34-35页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第35页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第35-38页 |
| 2.3 结果与分析 | 第38-44页 |
| 2.3.1 LIVE/DEAD Baclight 试剂盒定量单增李斯特菌标准曲线 | 第38-39页 |
| 2.3.2 单增李斯特菌在不同诱导条件下的存活曲线 | 第39-43页 |
| 2.3.3 荧光显微镜观察 VBNC 状态单增李斯特菌 | 第43-44页 |
| 2.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 冷鲜肉中单增李斯特菌培养与活菌数量检测 | 第45-58页 |
| 3.1 引言 | 第45页 |
| 3.2 材料与方法 | 第45-49页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第45-46页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第46-47页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第47-49页 |
| 3.3 结果与分析 | 第49-57页 |
| 3.3.1 qPCR 及 PMA-qPCR 法定量检测单增李斯特菌的标准曲线 | 第49-51页 |
| 3.3.2 正常单增李斯特菌在冷鲜肉中的生长状态 | 第51-52页 |
| 3.3.3 VBNC 单增李斯特菌在冷鲜肉中的生长状态 | 第52-54页 |
| 3.3.4 流式细胞术检测冷鲜肉中的单增李斯特菌 | 第54-57页 |
| 3.4 本章小结 | 第57-58页 |
| 第四章 基于细菌酯酶活性的 TOMA 分子设计与验证 | 第58-77页 |
| 4.1 引言 | 第58页 |
| 4.2 材料与方法 | 第58-67页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第58-59页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第59-60页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第60-67页 |
| 4.3 结果与分析 | 第67-76页 |
| 4.3.1 TOMA 分子结构表征与预期特性 | 第67-70页 |
| 4.3.2 TOMA 对细菌的透膜效果 | 第70-71页 |
| 4.3.3 TOMA 的酶活敏感性 | 第71-72页 |
| 4.3.4 TOMA 对 DNA 扩增的抑制效果 | 第72-74页 |
| 4.3.5 TOMA-qPCR 与 PMA-qPCR 法定量检测单增李斯特菌结果 | 第74-76页 |
| 4.4 本章小结 | 第76-77页 |
| 结论与展望 | 第77-80页 |
| 参考文献 | 第80-94页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95-97页 |
| 附件 | 第97页 |
