摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章:绪论 | 第14-27页 |
1.1 乙醇代谢及其对机体损伤机制 | 第14-16页 |
1.1.1 乙醇的代谢特点 | 第14页 |
1.1.2 乙醇代谢对机体的损伤机制 | 第14-16页 |
1.1.2.1 乙醇脱氢酶(ADH)系统 | 第15页 |
1.1.2.2 微粒体乙醇氧化系统(MEOS) | 第15-16页 |
1.1.2.3 过氧化氢酶(CAT)系统 | 第16页 |
1.2 市售现有解酒产品种类及主要功能因子概述 | 第16-17页 |
1.3 解酒肽的蛋白来源及制备工艺研究概述 | 第17-21页 |
1.3.1 生物活性肽 | 第17-19页 |
1.3.1.1 生物活性肽的消化吸收 | 第17-18页 |
1.3.1.2 生物活性肽的来源 | 第18-19页 |
1.3.2 大豆源解酒肽 | 第19页 |
1.3.3 玉米源解酒肽 | 第19页 |
1.3.4 解酒肽的制备方法 | 第19-21页 |
1.4 目前解酒肽产品及相关研究存在问题 | 第21页 |
1.5 主要研究内容与研究意义 | 第21-23页 |
1.5.1 研究内容 | 第21-22页 |
1.5.2 研究意义 | 第22-23页 |
参考文献 | 第23-27页 |
第二章:解酒肽与其它市售解酒产品的效果对比 | 第27-41页 |
2.1 前言 | 第27-28页 |
2.2 材料与方法 | 第28-32页 |
2.2.1 材料 | 第28页 |
2.2.2 主要试剂 | 第28页 |
2.2.3 主要仪器 | 第28-29页 |
2.2.4 实验方法 | 第29-32页 |
2.2.4.1 商业酶酶解工艺流程 | 第29页 |
2.2.4.2 冷冻干燥: | 第29页 |
2.2.4.3 总氮含量测定 | 第29-30页 |
2.2.4.4 体外测定ADH活性激发率 | 第30页 |
2.2.4.5 体内对ADH激发率测定方法 | 第30-31页 |
2.2.4.6 统计分析 | 第31-32页 |
2.3 结果与讨论 | 第32-36页 |
2.3.1 多肽样品总氮含量及体外ADH激活率分析 | 第32-33页 |
2.3.2 多肽对人体乙醇代谢的影响 | 第33-36页 |
2.4 本章小结 | 第36-38页 |
参考文献 | 第38-41页 |
第三章:体外ADH激活实验优化及高效酶解玉米黄粉制备低分子量促乙醇代谢活性肽的研究 | 第41-68页 |
3.1 前言 | 第41-42页 |
3.2 材料与方法 | 第42-47页 |
3.2.1 材料 | 第42页 |
3.2.2 主要试剂 | 第42-43页 |
3.2.3 主要仪器 | 第43-44页 |
3.2.4 实验方法 | 第44-47页 |
3.2.4.1 玉米黄粉前处理条件及蛋白酶解条件 | 第44页 |
3.2.4.2 凯式定氮与水解度的测定及福林酚法测蛋白 | 第44页 |
3.2.4.3 羟自由基清除与还原力测定测定 | 第44-45页 |
3.2.4.4 两次酶解制备工艺流程 | 第45-46页 |
3.2.4.5 氨基酸分析 | 第46页 |
3.2.4.6 活性炭吸附 | 第46页 |
3.2.4.7 体外ADH激活活性测定优化 | 第46页 |
3.2.4.8 高效液相法测定分子量 | 第46-47页 |
3.2.4.9 数据统计与分析 | 第47页 |
3.3 结果与讨论 | 第47-64页 |
3.3.1 不同前处理方法对玉米黄粉蛋白质利用率的影响 | 第47-48页 |
3.3.2 不同酶解方案对玉米黄粉利用率的影响 | 第48-50页 |
3.3.3 两次酶解氨基酸分析 | 第50-52页 |
3.3.4 体外ADH激活活性实验优化 | 第52-56页 |
3.3.4.1ADH酶浓度对方法的影响 | 第53页 |
3.3.4.2 酶解液蛋白浓度对联用法的影响 | 第53-55页 |
3.3.4.3 体外对ADH激活率测定优化方案的确定 | 第55-56页 |
3.3.5 活性炭吸附分析 | 第56-61页 |
3.3.5.1 活性炭吸附分析的设计 | 第56-57页 |
3.3.5.2 活性炭吸附分析的结果 | 第57-59页 |
3.3.5.3 吸附酶解液蛋白浓度测定 | 第59-60页 |
3.3.5.4 活性炭吸附对寡肽混合物结构成分的影响 | 第60-61页 |
3.3.6 吸附上清液氨基酸分析 | 第61-62页 |
3.3.7 吸附上清液体外抗氧化活性与体外对ADH激活率 | 第62-64页 |
3.4 本章小结 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-68页 |
第四章:玉米醇溶蛋白及谷蛋白酶解物的制备及其促乙醇代谢的活性分析 | 第68-88页 |
4.1 前言 | 第68-69页 |
4.2 材料与方法 | 第69-73页 |
4.2.1 材料 | 第69页 |
4.2.2 主要试剂 | 第69-70页 |
4.2.3 主要仪器 | 第70页 |
4.2.4 试验方法 | 第70-73页 |
4.2.4.1 玉米蛋白成分分离提取工艺及电泳分析 | 第70-71页 |
4.2.4.2 对醇溶蛋白预处理工艺的研究 | 第71-72页 |
4.2.4.3 玉米谷蛋白及醇溶蛋白酶解物制备工艺 | 第72页 |
4.2.4.4 凯式定氮及水解度的测定 | 第72-73页 |
4.2.4.5 体外对ADH激活率的测定 | 第73页 |
4.2.4.6 羟自由基清除能力的测定 | 第73页 |
4.2.4.7 高效液相测定分子量 | 第73页 |
4.2.4.8 体外模拟胃、肠道消化 | 第73页 |
4.2.4.9 数据统计与分析 | 第73页 |
4.3 结果与讨论 | 第73-85页 |
4.3.1 玉米醇溶蛋白及谷蛋白提取分离后的电泳分析 | 第73-74页 |
4.3.2 玉米醇溶蛋白酶解预处理工艺研究 | 第74-76页 |
4.3.3 谷蛋白及醇溶蛋白酶解物的酶解及其分析 | 第76-78页 |
4.3.4 体外ADH激活率比较分析 | 第78-79页 |
4.3.5 谷蛋白、醇溶蛋白酶解物体外模拟消化 | 第79-81页 |
4.3.6 酶解物抗氧化性与体外ADH激活率相关性分析 | 第81-83页 |
4.3.7 本章小结 | 第83-85页 |
参考文献 | 第85-88页 |
结论与展望 | 第88-90页 |
结论 | 第88页 |
本文的主要创新点 | 第88-89页 |
展望 | 第89-90页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第90-92页 |
致谢 | 第92-93页 |
附件 | 第93页 |