| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-21页 |
| 1.1 水产动物的自溶 | 第10-13页 |
| 1.1.1 鱼的自溶 | 第10-11页 |
| 1.1.2 虾的自溶 | 第11-12页 |
| 1.1.3 头足类的自溶 | 第12-13页 |
| 1.2 海参 | 第13-16页 |
| 1.2.1 海参体壁的解剖结构 | 第13-14页 |
| 1.2.2 海参体壁胶原组织的微观结构 | 第14-15页 |
| 1.2.3 海参体壁可变胶原组织相关研究 | 第15页 |
| 1.2.4 海参的自溶 | 第15-16页 |
| 1.3 胶原 | 第16-19页 |
| 1.3.1 胶原的提取方法 | 第16-17页 |
| 1.3.2 胶原的定量研究方法 | 第17-18页 |
| 1.3.3 胶原分子及超分子结构研究方法 | 第18-19页 |
| 1.4 胶原对酶的抗性 | 第19页 |
| 1.5 本论文的研究内容与意义 | 第19-21页 |
| 第二章 材料与方法 | 第21-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-25页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第21页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第22-24页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-33页 |
| 2.2.1 刺参的预处理 | 第25页 |
| 2.2.2 刺参自溶不同时间水溶性成分的提取 | 第25-26页 |
| 2.2.2.1 刺参体壁水溶性成分溶出率的测定 | 第25-26页 |
| 2.2.2.2 刺参体壁糖胺聚糖溶出率的测定 | 第26页 |
| 2.2.3 粗胶原纤维的提取 | 第26页 |
| 2.2.4 水分含量的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.5 糖胺聚糖含量的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.6 羟脯氨酸含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.2.7 氨基酸组成分析 | 第29-30页 |
| 2.2.8 SDS-PAGE电泳 | 第30页 |
| 2.2.9 分子量分布分析 | 第30页 |
| 2.2.10 石蜡切片制作及V-G染色 | 第30-32页 |
| 2.2.10.1 载玻片的处理 | 第30页 |
| 2.2.10.2 石蜡切片制作 | 第30-31页 |
| 2.2.10.3 石蜡切片V-G染色 | 第31-32页 |
| 2.2.11 扫描电镜及透射电镜样品前处理 | 第32页 |
| 2.2.11.1 扫描电镜样品前处理 | 第32页 |
| 2.2.11.2 透射电镜样品前处理 | 第32页 |
| 2.2.12 统计学分析方法 | 第32-33页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第33-47页 |
| 3.1 刺参自溶前后表观形态变化 | 第33-34页 |
| 3.2 刺参自溶前后体壁真皮组织微观及超微结构变化 | 第34-40页 |
| 3.2.1 刺参体壁真皮组织的光镜观察 | 第34-36页 |
| 3.2.2 刺参体壁胶原组织的SEM观察 | 第36-37页 |
| 3.2.3 刺参体壁不可溶成分的SEM观察 | 第37-38页 |
| 3.2.4 刺参体壁胶原组织的TEM观察 | 第38-40页 |
| 3.3 刺参自溶前后体壁水溶性成分的变化 | 第40-45页 |
| 3.3.1 水溶性成分溶出率 | 第40-41页 |
| 3.3.2 糖胺聚糖溶出率 | 第41-42页 |
| 3.3.3 水溶性成分的胶原蛋白含量 | 第42-43页 |
| 3.3.4 水溶性成分的SDS-PAGE分析 | 第43-44页 |
| 3.3.5 水溶性成分的分子量分布分析 | 第44-45页 |
| 3.4 刺参自溶前后体壁粗胶原纤维氨基酸组成变化 | 第45-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 致谢 | 第55页 |