| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-29页 |
| 1.1 燕麦的营养与加工 | 第14-16页 |
| 1.1.1 燕麦概述 | 第14页 |
| 1.1.2 燕麦的营养组分与功能 | 第14-16页 |
| 1.1.3 燕麦的加工现状 | 第16页 |
| 1.2 生物加工对谷物品质的影响 | 第16-19页 |
| 1.2.1 发芽对谷物品质的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.2 发酵对谷物品质的影响 | 第17-18页 |
| 1.2.3 酶解对谷物品质的影响 | 第18-19页 |
| 1.3 燕麦多酚的研究概况 | 第19-23页 |
| 1.3.1 多酚的分类 | 第19-21页 |
| 1.3.2 多酚的功能活性 | 第21-23页 |
| 1.4 有机化合物的分离纯化与结构鉴定 | 第23-26页 |
| 1.4.1 化合物的分离纯化方法 | 第23-24页 |
| 1.4.2 有机化合物的结构鉴定 | 第24-26页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第26页 |
| 1.6 研究内容和技术路线 | 第26-29页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第26-28页 |
| 1.6.2 技术路线 | 第28-29页 |
| 第二章 不同酶解处理对燕麦粉中酚类物质含量及抗氧化活性的影响 | 第29-62页 |
| 2.1 材料与仪器设备 | 第29-30页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第29页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第29-30页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第30页 |
| 2.2 实验内容与方法 | 第30-33页 |
| 2.2.1 燕麦淀粉、分离蛋白（OPI）及麸皮的制备 | 第30-31页 |
| 2.2.2 酶解处理 | 第31页 |
| 2.2.3 多酚物质的提取 | 第31-32页 |
| 2.2.4 总多酚含量的测定 | 第32页 |
| 2.2.5 多酚组分的测定（HPLC-DAD） | 第32页 |
| 2.2.6 体外抗氧化活性的测定 | 第32-33页 |
| 2.2.7 统计分析 | 第33页 |
| 2.3 结果分析与讨论 | 第33-60页 |
| 2.3.1 酶解处理对燕麦粉中可提取的总多酚含量的影响 | 第33-35页 |
| 2.3.2 酶解处理对燕麦粉中可提取的多酚组分的影响 | 第35-41页 |
| 2.3.3 酶解处理对燕麦粉抗氧化活性的影响 | 第41-47页 |
| 2.3.4 酶解处理对燕麦分离组分中可提取的抗氧化活性物质的影响 | 第47-54页 |
| 2.3.5 酶解处理对燕麦分离组分抗氧化活性的影响 | 第54-58页 |
| 2.3.6 不同酶解处理释放燕麦粉中酚类物质的作用机制 | 第58-60页 |
| 2.4 小结 | 第60-62页 |
| 第三章 燕麦淀粉水解所得未知抗氧化物质的确定与分离纯化 | 第62-75页 |
| 3.1 材料与仪器设备 | 第62-63页 |
| 3.1.1 实验样品 | 第62页 |
| 3.1.2 主要材料和试剂 | 第62-63页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第63页 |
| 3.2 实验内容与方法 | 第63-65页 |
| 3.2.1 燕麦淀粉的酶解处理 | 第63页 |
| 3.2.2 燕麦淀粉水解所得未知抗氧化物质（UK）的提取 | 第63页 |
| 3.2.3 薄层层析（TLC）条件优化 | 第63-64页 |
| 3.2.4 薄层层析法制备UK | 第64页 |
| 3.2.5 高效液相色谱检测UK | 第64页 |
| 3.2.6 抗氧化活性测定 | 第64-65页 |
| 3.3 结果分析与讨论 | 第65-73页 |
| 3.3.1 淀粉酶水解淀粉对UK产量的影响 | 第65-66页 |
| 3.3.2 薄层层析的条件优化 | 第66-67页 |
| 3.3.3 薄层层析分离纯化UK | 第67-68页 |
| 3.3.4 UK的高效液相色谱检测 | 第68-69页 |
| 3.3.5 UK的抗氧化活性 | 第69-73页 |
| 3.4 小结 | 第73-75页 |
| 第四章 燕麦淀粉水解所得未知抗氧化物质的抗肿瘤活性 | 第75-91页 |
| 4.1 材料与仪器设备 | 第76-77页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第76页 |
| 4.1.2 主要试剂、材料 | 第76页 |
| 4.1.3 主要仪器设备 | 第76-77页 |
| 4.2 实验内容与方法 | 第77-80页 |
| 4.2.1 UK样品的配制 | 第77页 |
| 4.2.2 细胞培养 | 第77页 |
| 4.2.3 细胞活力与增殖测定 | 第77页 |
| 4.2.4 细胞周期和凋亡实验 | 第77-78页 |
| 4.2.5 肿瘤细胞中凋亡相关基因mRNA表达量的检测 | 第78-80页 |
| 4.2.6 MMPs和pSTATs分析 | 第80页 |
| 4.2.7 统计学分析方法 | 第80页 |
| 4.3 结果分析与讨论 | 第80-89页 |
| 4.3.1 UK处理对细胞活力的影响 | 第80-81页 |
| 4.3.2 UK处理对细胞周期的影响 | 第81-83页 |
| 4.3.3 UK处理对细胞凋亡的影响 | 第83-85页 |
| 4.3.4 UK处理对细胞凋亡相关基因mRNA表达水平的影响 | 第85-86页 |
| 4.3.5 UK处理对pSTATs和MMPs的影响 | 第86-89页 |
| 4.4 小结 | 第89-91页 |
| 第五章 燕麦淀粉水解所得未知抗氧化物质的结构鉴定 | 第91-100页 |
| 5.1 材料与仪器设备 | 第91-92页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第91页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第91页 |
| 5.1.3 主要仪器与设备 | 第91-92页 |
| 5.2 实验内容与方法 | 第92页 |
| 5.2.1 燕麦淀粉的酶解处理 | 第92页 |
| 5.2.2 UK物质的提取与制备 | 第92页 |
| 5.2.3 高效液相色谱法检测UK | 第92页 |
| 5.2.4 紫外-可见吸收光谱扫描 | 第92页 |
| 5.2.5 傅里叶红外光谱（FT-IR）分析 | 第92页 |
| 5.2.6 核磁共振波谱（NMR）分析 | 第92页 |
| 5.3 结果分析与讨论 | 第92-98页 |
| 5.3.1 UK的外观形态 | 第92-93页 |
| 5.3.2 UK的结构解析 | 第93-98页 |
| 5.4 小结 | 第98-100页 |
| 第六章 燕麦淀粉水解所得抗氧化物质的产生条件 | 第100-109页 |
| 6.1 材料与仪器设备 | 第100-101页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第100页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第100页 |
| 6.1.3 主要仪器与设备 | 第100-101页 |
| 6.2 实验内容与方法 | 第101-102页 |
| 6.2.1 燕麦淀粉的制备 | 第101页 |
| 6.2.2 燕麦淀粉的酶解处理 | 第101页 |
| 6.2.3 UK物质的提取 | 第101页 |
| 6.2.4 UK物质的制备 | 第101页 |
| 6.2.5 DE（dextrose equivalent）值的测定 | 第101-102页 |
| 6.2.6 高效液相色谱法检测UK | 第102页 |
| 6.2.7 扫描电子显微镜制样和观察 | 第102页 |
| 6.3 结果分析与讨论 | 第102-108页 |
| 6.3.1 淀粉酶水解处理对UK含量的影响 | 第102-103页 |
| 6.3.2 淀粉酶解程度（DE值）对UK含量的影响 | 第103-104页 |
| 6.3.3 淀粉酶水解处理对淀粉微观形态的影响 | 第104-106页 |
| 6.3.4 溶剂中的HCl对UK含量的影响 | 第106-108页 |
| 6.4 小结 | 第108-109页 |
| 第七章 结论、创新点与展望 | 第109-112页 |
| 7.1 结论 | 第109-110页 |
| 7.2 创新点 | 第110-111页 |
| 7.3 问题与展望 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-128页 |
| 致谢 | 第128-129页 |
| 作者简介 | 第129页 |
