| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第16-36页 |
| 1.1 霉菌毒素危害及检测意义 | 第16-17页 |
| 1.2 农产品中的典型霉菌毒素 | 第17-21页 |
| 1.2.1 赭曲霉毒素 | 第17-19页 |
| 1.2.2 伏马毒素 | 第19-21页 |
| 1.3 现行霉菌毒素检测技术 | 第21-23页 |
| 1.3.1 生物检测法 | 第21页 |
| 1.3.2 色谱法 | 第21-23页 |
| 1.4 基于分子识别原理的霉菌毒素检测技术研究进展 | 第23-34页 |
| 1.4.1 基于抗原-抗体识别原理的霉菌毒素免疫传感技术研究进展 | 第23-24页 |
| 1.4.2 基于核酸适配体分子识别原理的霉菌毒素适配体传感技术研究进展 | 第24-34页 |
| 1.5 本研究的目的意义 | 第34-35页 |
| 1.6 本研究的主要内容 | 第35-36页 |
| 第二章 Au@Fe_3O_4杂化纳米粒子标记的磁控适配体传感体系构建及其对OTA的比色法灵敏检测 | 第36-51页 |
| 2.1 实验材料 | 第37-38页 |
| 2.2 实验仪器 | 第38页 |
| 2.3 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.3.1 Au@Fe_3O_4 NPs的制备 | 第38页 |
| 2.3.2 Au@Fe_3O_4 NPs类酶活性研究 | 第38-39页 |
| 2.3.3 Au@Fe_3O_4 NPs标记的纳米生物探针的制备 | 第39页 |
| 2.3.4 适配体传感体系构建 | 第39-40页 |
| 2.4 对OTA的比色法检测 | 第40页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第40-49页 |
| 2.5.1 Au@Fe_3O_4 NPs的表征 | 第40-43页 |
| 2.5.2 Au@Fe_3O_4 NPs类过氧化物酶催化活性研究 | 第43-45页 |
| 2.5.3 Au@Fe_3O_4标记的纳米生物探针的制备与表征 | 第45-46页 |
| 2.5.4 Au@Fe_3O_4标记的适配体传感体系的构建与检测原理 | 第46-47页 |
| 2.5.5 传感体系对OTA的比色检测 | 第47-49页 |
| 2.5.6 传感体系的选择性和重现性 | 第49页 |
| 2.5.7 实际样检测 | 第49页 |
| 2.6 本章小结 | 第49-51页 |
| 第三章 NGQDs@SiO_2杂化纳米粒子标记的磁控适配体传感体系构建及对OTA的电化学/荧光双方法检测 | 第51-69页 |
| 3.1 实验材料 | 第52-53页 |
| 3.2 实验仪器 | 第53页 |
| 3.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 3.3.1 NGQDs的制备 | 第53-54页 |
| 3.3.2 NGQDs@SiO_2的制备 | 第54页 |
| 3.3.3 c DNA-NGQDs@SiO_2纳米生物探针的制备 | 第54页 |
| 3.3.4 Fe_3O_4@Au MBs的制备 | 第54-55页 |
| 3.3.5 MB-aptamer的制备 | 第55页 |
| 3.3.6 MB-aptamer/c DNA-NGQDs@SiO_2纳米生物复合物的制备 | 第55页 |
| 3.4 对OTA的双方法检测 | 第55-56页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第56-67页 |
| 3.5.1 NGQDs的表征 | 第56-58页 |
| 3.5.2 NGQDs@SiO_2的表征 | 第58-59页 |
| 3.5.3 适配体传感体系的制备 | 第59-63页 |
| 3.5.4 检测原理及检测条件优化 | 第63-64页 |
| 3.5.5 OTA的ECL检测 | 第64-65页 |
| 3.5.6 OTA的FL检测 | 第65-66页 |
| 3.5.7 传感体系的选择性和重现性 | 第66-67页 |
| 3.5.8 实际样检测 | 第67页 |
| 3.6 本章小结 | 第67-69页 |
| 第四章 Cd Te@SiO_2@Cd Te杂化纳米粒子标记的磁控适配体传感体系构建及其对OTA的荧光法超灵敏检测 | 第69-85页 |
| 4.1 实验材料 | 第70-71页 |
| 4.2 实验仪器 | 第71页 |
| 4.3 实验方法 | 第71-73页 |
| 4.3.1 水溶性Cd Te QDs的制备 | 第71页 |
| 4.3.2 Cd Te@SiO_2@Cd Te杂化荧光纳米粒子的制备 | 第71-72页 |
| 4.3.3 c DNA与Cd Te@SiO_2@Cd Te HFNPs的生物偶联 | 第72页 |
| 4.3.4 aptamer在MB表面的生物偶联 | 第72-73页 |
| 4.4 多功能纳米生物复合物的制备及对OTA的荧光光谱检测 | 第73页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第73-84页 |
| 4.5.1 Fe_3O_4@Au MBs的表征 | 第73-75页 |
| 4.5.2 Cd Te@SiO_2@Cd Te HFNPs的表征 | 第75-78页 |
| 4.5.3 多功能纳米生物复合物的表征 | 第78-79页 |
| 4.5.4 检测原理及实验条件优化 | 第79-82页 |
| 4.5.5 对OTA的超灵敏荧光检测 | 第82页 |
| 4.5.6 传感体系的选择性和重现性 | 第82-83页 |
| 4.5.7 实际样检测 | 第83-84页 |
| 4.6 本章小结 | 第84-85页 |
| 第五章 SiO_2@Cd Te和SiO_2@Pb S杂化纳米粒子标记的磁控适配体传感体系构建及其对OTA和FB1的电化学同时检测 | 第85-102页 |
| 5.1 实验材料 | 第86-87页 |
| 5.2 实验仪器 | 第87页 |
| 5.3 实验方法 | 第87-90页 |
| 5.3.1 Fe_3O_4@Au MBs的制备 | 第87页 |
| 5.3.2 Cd Te QDs和水溶性Pb S QDs溶液的制备 | 第87-88页 |
| 5.3.3 SiO_2@Cd Te和SiO_2@Pb S杂化纳米粒子的制备 | 第88页 |
| 5.3.4 MB-c DNA1和MB-c DNA2捕获探针的制备 | 第88-89页 |
| 5.3.5 aptamer1-SiO_2@Cd Te和aptamer2-SiO_2@Pb S纳米生物探针的制备 | 第89页 |
| 5.3.6 磁控纳米生物复合物的制备 | 第89-90页 |
| 5.4 对OTA和FB1的电化学同时检测 | 第90-91页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第91-100页 |
| 5.5.1 Cd Te QDs和Pb S QDs的表征 | 第91-92页 |
| 5.5.2 SiO_2@Cd Te和SiO_2@Pb S杂化纳米粒子的表征 | 第92-94页 |
| 5.5.3 aptamer1-SiO_2@Cd Te以及aptamer2-SiO_2@Pb S纳米生物探针的表征 | 第94-95页 |
| 5.5.4 磁控纳米生物复合物的制备及检测原理 | 第95-97页 |
| 5.5.5 检测条件优化 | 第97-98页 |
| 5.5.6 对OTA和FB1的电化学同时检测 | 第98-99页 |
| 5.5.7 传感体系的选择性和重现性 | 第99-100页 |
| 5.5.8 实际玉米样中OTA和FB1的检测 | 第100页 |
| 5.6 本章小结 | 第100-102页 |
| 第六章 结论与展望 | 第102-106页 |
| 6.1 结论 | 第102-105页 |
| 6.2 展望 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-121页 |
| 致谢 | 第121-122页 |
| 攻读博士期间取得的研究成果 | 第122-123页 |
