| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第1章 文献综述 | 第7-19页 |
| 1.1 蚕蛹油概述 | 第7-11页 |
| 1.1.1 蚕蛹概况 | 第7页 |
| 1.1.2 蚕蛹油组成成分及其生物学活性 | 第7-8页 |
| 1.1.3 蚕蛹油的研究进展 | 第8-11页 |
| 1.2 α-亚麻酸的研究概况 | 第11-12页 |
| 1.2.1 α-亚麻酸概述 | 第11页 |
| 1.2.2 α-亚麻酸的生物学特性 | 第11页 |
| 1.2.3 α-亚麻酸的应用 | 第11-12页 |
| 1.3 胆固醇代谢途径及相关调控因子概述 | 第12-15页 |
| 1.3.1 LXR | 第12-13页 |
| 1.3.2 PPAR | 第13页 |
| 1.3.3 ABCA1 | 第13-14页 |
| 1.3.4 ABCG1 | 第14页 |
| 1.3.5 CYP7A1 | 第14-15页 |
| 1.4 本课题研究的目的和意义 | 第15-19页 |
| 1.4.1 研究目的和意义 | 第15-16页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第16页 |
| 1.4.3 采用的技术路线 | 第16-19页 |
| 第2章 试验材料与方法 | 第19-33页 |
| 2.1 试验材料和试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 主要溶液配制 | 第20-21页 |
| 2.2 主要仪器和设备 | 第21-22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-33页 |
| 2.3.1 蚕蛹油PUFAs组成成分分析 | 第22-23页 |
| 2.3.2 细胞培养 | 第23页 |
| 2.3.3 试验样品的配制 | 第23-24页 |
| 2.3.4 HepG2和L02细胞脂肪变性模型的建立 | 第24页 |
| 2.3.5 SPO PUFAs和ALA对HepG2和L02细胞增殖的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.6 油红O染色法定性观察SPO PUFAs和ALA对细胞内的脂质积累的影响 | 第25页 |
| 2.3.7 SPO PUFAs和ALA对脂变HepG2和L02细胞内TC含量和上清液中TBA含量的影响 | 第25-27页 |
| 2.3.8 SPO PUFAs和ALA对脂变HepG2和L02细胞胆固醇代谢相关基因mRNA相对表达量的影响 | 第27-32页 |
| 2.3.9 SPO PUFAs和ALA对脂变L02细胞相关蛋白表达水平的影响 | 第32页 |
| 2.3.10 数据处理 | 第32-33页 |
| 第3章 结果与分析 | 第33-49页 |
| 3.1 SPO PUFAs的脂肪酸组成 | 第33-34页 |
| 3.2 SPO PUFAs和ALA对HepG2和L02细胞增殖活力的影响 | 第34-35页 |
| 3.3 SPO PUFAs和ALA对HepG2和L02细胞脂质积累的影响 | 第35-37页 |
| 3.4 SPO PUFAs和ALA对HepG2和L02细胞TC和TBA含量的影响 | 第37-39页 |
| 3.5 SPO PUFAs和ALA对脂变HepG2和L02细胞胆固醇代谢相关基因mRNA表达的影响 | 第39-46页 |
| 3.5.1 RNA纯度和完整性鉴定 | 第39-40页 |
| 3.5.2 各基因退火温度的优化 | 第40-41页 |
| 3.5.3 SPO PUFAs和ALA对脂变HepG2细胞相关基因mRNA表达的影响 | 第41-44页 |
| 3.5.4 SPO PUFAs和ALA对脂变L02细胞相关基因mRNA表达的影响 | 第44-46页 |
| 3.6 SPO PUFAs和ALA对脂变L02细胞相关蛋白表达的影响 | 第46-49页 |
| 第4章 讨论 | 第49-51页 |
| 第5章 结论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第65页 |
