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燕麦β-葡聚糖的生物酶法降解

摘要第1-5页
Abstract第5-10页
第一章 文献综述第10-21页
   ·燕麦简介第10-12页
     ·燕麦的营养成分及功能第10-11页
     ·燕麦的应用现状第11-12页
   ·燕麦麸皮简介第12-13页
   ·燕麦β-葡聚糖简介第13-19页
     ·燕麦β-葡聚糖的提取第14-15页
     ·燕麦β-葡聚糖的结构研究第15页
     ·燕麦β-葡聚糖的性质第15-16页
       ·燕麦β-葡聚糖的理化性质第15-16页
       ·燕麦β-葡聚糖的流变学特性第16页
     ·燕麦β葡聚糖的相对分子质量分布第16-17页
     ·燕麦β-葡聚糖的生理功能第17-18页
     ·燕麦β-葡聚糖的降解第18-19页
       ·化学降解法第18页
       ·物理降解法第18页
       ·生物降解法第18-19页
   ·β-葡聚糖水解酶简介第19页
   ·本课题的立题意义和研究内容第19-21页
第二章 实验方法第21-31页
   ·主要材料与设备第21-22页
     ·实验原料第21页
     ·实验药品第21-22页
     ·实验菌种第22页
     ·主要设备第22页
   ·β-葡聚糖含量测定第22-24页
     ·β-葡聚糖标准曲线的绘制第23页
     ·燕麦β-葡聚糖纯度的测定第23-24页
   ·燕麦β-葡聚糖的提取第24-25页
     ·燕麦麸中β-葡聚糖的提取第24-25页
     ·β-葡聚糖提取率及纯度的计算第25页
   ·β-葡聚糖水解酶产酶发酵条件优化第25-28页
     ·菌种的斜面培养第25-26页
       ·斜面培养基的制备第25-26页
       ·接菌第26页
       ·菌种的培养第26页
     ·固态发酵第26页
     ·酶液的提取第26页
     ·酶活的测定第26-28页
       ·DNS(3,5-二硝基水杨酸)试剂配制第26-27页
       ·葡萄糖标准曲线绘制第27页
       ·β-葡聚糖水解酶酶活力测定第27-28页
     ·培养基组分及发酵条件优化第28页
   ·燕麦β-葡聚糖的生物酶法降解第28页
   ·燕麦β-葡聚糖及酶解产物相对分子质量研究第28-29页
     ·SepharaoseCL-4B琼脂糖凝胶柱的处理第28-29页
     ·凝胶色谱柱的校准及标准曲线的确定第29页
     ·凝胶色谱柱测定β-葡聚糖分子量的分布第29页
   ·燕麦β-葡聚糖的结构分析第29-31页
     ·扫描电子显微镜(SEM)分析第29-30页
     ·紫外光谱分析第30页
     ·红外光谱分析第30页
     ·核磁共振(NMR)分析第30-31页
第三章 结果与讨论第31-49页
   ·β-葡聚糖含量的测定第31-32页
     ·绘制β-葡聚糖标准曲线第31-32页
     ·β-葡聚糖提取率与纯度的测定第32页
   ·β-葡聚糖水解酶产酶培养基及发酵条件优化第32-39页
     ·葡萄糖标准曲线的绘制第32-33页
     ·不同菌种产酶能力的比较第33页
     ·产酶培养基优化第33-38页
       ·麸皮与豆粕的质量比对酶活力的影响第33-34页
       ·辅助氮源的选择第34-35页
       ·辅助碳源的选择第35页
       ·辅助碳源的加入量第35-36页
       ·无机氮源的选择第36-37页
       ·无机氮源添加量对酶活力的影响第37页
       ·水分加入量对酶活的影响第37-38页
     ·发酵条件的优化第38-39页
   ·燕麦β-葡聚糖的相对分子质量分布第39-43页
     ·燕麦β-葡聚糖相对分子质量分布的测定第39-41页
       ·标准分子量葡聚糖(Dextran)的凝胶过滤色谱洗脱曲线第39-40页
       ·相对分子质量标准曲线第40-41页
       ·燕麦β-葡聚糖产品分子量分布范围的确定第41页
     ·β-葡聚糖水解酶对燕麦β-葡聚糖相对分子质量分布的影响第41-43页
   ·燕麦β-葡聚糖及水解产物结构分析第43-49页
     ·扫描电子显微镜分析结果第43-44页
     ·紫外光谱分析第44-45页
     ·红外光谱分析第45-47页
     ·核磁共振(NMR)结果分析第47-49页
       ·~1H-NMR图谱分析结果第47-48页
       ·~(13)C-NMR图谱分析结果第48-49页
结论第49-50页
参考文献第50-53页
致谢第53页

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