摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-21页 |
·燕麦简介 | 第10-12页 |
·燕麦的营养成分及功能 | 第10-11页 |
·燕麦的应用现状 | 第11-12页 |
·燕麦麸皮简介 | 第12-13页 |
·燕麦β-葡聚糖简介 | 第13-19页 |
·燕麦β-葡聚糖的提取 | 第14-15页 |
·燕麦β-葡聚糖的结构研究 | 第15页 |
·燕麦β-葡聚糖的性质 | 第15-16页 |
·燕麦β-葡聚糖的理化性质 | 第15-16页 |
·燕麦β-葡聚糖的流变学特性 | 第16页 |
·燕麦β葡聚糖的相对分子质量分布 | 第16-17页 |
·燕麦β-葡聚糖的生理功能 | 第17-18页 |
·燕麦β-葡聚糖的降解 | 第18-19页 |
·化学降解法 | 第18页 |
·物理降解法 | 第18页 |
·生物降解法 | 第18-19页 |
·β-葡聚糖水解酶简介 | 第19页 |
·本课题的立题意义和研究内容 | 第19-21页 |
第二章 实验方法 | 第21-31页 |
·主要材料与设备 | 第21-22页 |
·实验原料 | 第21页 |
·实验药品 | 第21-22页 |
·实验菌种 | 第22页 |
·主要设备 | 第22页 |
·β-葡聚糖含量测定 | 第22-24页 |
·β-葡聚糖标准曲线的绘制 | 第23页 |
·燕麦β-葡聚糖纯度的测定 | 第23-24页 |
·燕麦β-葡聚糖的提取 | 第24-25页 |
·燕麦麸中β-葡聚糖的提取 | 第24-25页 |
·β-葡聚糖提取率及纯度的计算 | 第25页 |
·β-葡聚糖水解酶产酶发酵条件优化 | 第25-28页 |
·菌种的斜面培养 | 第25-26页 |
·斜面培养基的制备 | 第25-26页 |
·接菌 | 第26页 |
·菌种的培养 | 第26页 |
·固态发酵 | 第26页 |
·酶液的提取 | 第26页 |
·酶活的测定 | 第26-28页 |
·DNS(3,5-二硝基水杨酸)试剂配制 | 第26-27页 |
·葡萄糖标准曲线绘制 | 第27页 |
·β-葡聚糖水解酶酶活力测定 | 第27-28页 |
·培养基组分及发酵条件优化 | 第28页 |
·燕麦β-葡聚糖的生物酶法降解 | 第28页 |
·燕麦β-葡聚糖及酶解产物相对分子质量研究 | 第28-29页 |
·SepharaoseCL-4B琼脂糖凝胶柱的处理 | 第28-29页 |
·凝胶色谱柱的校准及标准曲线的确定 | 第29页 |
·凝胶色谱柱测定β-葡聚糖分子量的分布 | 第29页 |
·燕麦β-葡聚糖的结构分析 | 第29-31页 |
·扫描电子显微镜(SEM)分析 | 第29-30页 |
·紫外光谱分析 | 第30页 |
·红外光谱分析 | 第30页 |
·核磁共振(NMR)分析 | 第30-31页 |
第三章 结果与讨论 | 第31-49页 |
·β-葡聚糖含量的测定 | 第31-32页 |
·绘制β-葡聚糖标准曲线 | 第31-32页 |
·β-葡聚糖提取率与纯度的测定 | 第32页 |
·β-葡聚糖水解酶产酶培养基及发酵条件优化 | 第32-39页 |
·葡萄糖标准曲线的绘制 | 第32-33页 |
·不同菌种产酶能力的比较 | 第33页 |
·产酶培养基优化 | 第33-38页 |
·麸皮与豆粕的质量比对酶活力的影响 | 第33-34页 |
·辅助氮源的选择 | 第34-35页 |
·辅助碳源的选择 | 第35页 |
·辅助碳源的加入量 | 第35-36页 |
·无机氮源的选择 | 第36-37页 |
·无机氮源添加量对酶活力的影响 | 第37页 |
·水分加入量对酶活的影响 | 第37-38页 |
·发酵条件的优化 | 第38-39页 |
·燕麦β-葡聚糖的相对分子质量分布 | 第39-43页 |
·燕麦β-葡聚糖相对分子质量分布的测定 | 第39-41页 |
·标准分子量葡聚糖(Dextran)的凝胶过滤色谱洗脱曲线 | 第39-40页 |
·相对分子质量标准曲线 | 第40-41页 |
·燕麦β-葡聚糖产品分子量分布范围的确定 | 第41页 |
·β-葡聚糖水解酶对燕麦β-葡聚糖相对分子质量分布的影响 | 第41-43页 |
·燕麦β-葡聚糖及水解产物结构分析 | 第43-49页 |
·扫描电子显微镜分析结果 | 第43-44页 |
·紫外光谱分析 | 第44-45页 |
·红外光谱分析 | 第45-47页 |
·核磁共振(NMR)结果分析 | 第47-49页 |
·~1H-NMR图谱分析结果 | 第47-48页 |
·~(13)C-NMR图谱分析结果 | 第48-49页 |
结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-53页 |
致谢 | 第53页 |