| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-20页 |
| 1.1 水蜜桃的概述 | 第13页 |
| 1.1.1 水蜜桃简介 | 第13页 |
| 1.1.2 主要产地及生产现状 | 第13页 |
| 1.2 水蜜桃采后病害的主要防治方法 | 第13-14页 |
| 1.2.1 化学方法 | 第13-14页 |
| 1.2.2 物理方法 | 第14页 |
| 1.2.3 生物方法 | 第14页 |
| 1.3 拮抗酵母菌概述 | 第14-18页 |
| 1.3.1 拮抗酵母菌的优势 | 第14-15页 |
| 1.3.2 拮抗酵母的作用机制 | 第15-16页 |
| 1.3.3 生防系统 | 第16页 |
| 1.3.4 拮抗酵母抑菌效果的优化 | 第16-18页 |
| 1.4 生防制剂 | 第18页 |
| 1.4.1 固体制剂 | 第18页 |
| 1.4.2 液体制剂 | 第18页 |
| 1.5 本课题研究的目的、意义及内容 | 第18-20页 |
| 第二章 拮抗酵母菌的分离、筛选及鉴定 | 第20-26页 |
| 2.1 前言 | 第20页 |
| 2.2 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 仪器与设备 | 第20-21页 |
| 2.2.2 培养基 | 第21页 |
| 2.2.3 供试材料 | 第21页 |
| 2.2.4 病原菌及其孢子悬浮液制备 | 第21页 |
| 2.2.5 拮抗酵母菌的分离 | 第21-22页 |
| 2.2.6 拮抗酵母菌的筛选 | 第22页 |
| 2.2.7 拮抗酵母菌株的形态学观察 | 第22-23页 |
| 2.2.8 拮抗酵母菌的鉴定 | 第23页 |
| 2.2.9 数据统计与分析 | 第23页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第23-25页 |
| 2.3.1 分离与筛选的拮抗酵母菌 | 第23-24页 |
| 2.3.2 拮抗酵母菌的形态学特征 | 第24页 |
| 2.3.3 拮抗酵母菌的分子鉴定 | 第24-25页 |
| 2.4 本章小结 | 第25-26页 |
| 第三章 K.apiculataY23抑制水蜜桃采后炭疽病机理的研究 | 第26-37页 |
| 3.1 前言 | 第26页 |
| 3.2 材料与方法 | 第26-29页 |
| 3.2.1 仪器与设备 | 第26页 |
| 3.2.2 培养基 | 第26页 |
| 3.2.3 供试材料 | 第26-27页 |
| 3.2.4 病原菌及其孢子悬浮液制备 | 第27页 |
| 3.2.5 K.apiculataY23抑制水蜜桃采后炭疽病最佳浓度的确定 | 第27页 |
| 3.2.6 K.apiculataY23对C.gloeosporioides孢子萌发的影响 | 第27页 |
| 3.2.7 K.apiculataY23寄生作用的观察 | 第27页 |
| 3.2.8 平板对峙培养研究K.apiculataY23的抑菌效果 | 第27-28页 |
| 3.2.9 倒扣实验研究K.apiculataY23的抑菌效果 | 第28页 |
| 3.2.10 K.apiculataY23对水蜜桃防卫反应的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.11 数据统计与分析 | 第29页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第29-35页 |
| 3.3.1 K.apiculataY23抑制水蜜桃采后炭疽病最佳浓度 | 第29页 |
| 3.3.2 K.apiculataY23对C.gloeosporioides孢子萌发的影响 | 第29-30页 |
| 3.3.3 K.apiculataY23的寄生作用 | 第30页 |
| 3.3.4 平板对峙培养时K.apiculataY23的抑菌效果 | 第30-32页 |
| 3.3.5 倒扣实验时K.apiculataY23的抑菌效果 | 第32-34页 |
| 3.3.6 K.apiculataY23影响水蜜桃的防卫反应 | 第34-35页 |
| 3.4 本章小结 | 第35-37页 |
| 第四章 K.apiculataY23抑制纤维素酶活性的初步探究 | 第37-45页 |
| 4.1 前言 | 第37-38页 |
| 4.2 材料与方法 | 第38-39页 |
| 4.2.1 仪器与设备 | 第38页 |
| 4.2.2 培养基 | 第38页 |
| 4.2.3 供试材料 | 第38页 |
| 4.2.4 病原菌 | 第38页 |
| 4.2.5 C.gloeosporioides产纤维素酶的观察 | 第38-39页 |
| 4.2.6 K.apiculataY23对纤维素酶活性的抑制效果 | 第39页 |
| 4.2.7 K.apiculataY23抑制纤维素酶活性的机理探究 | 第39页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第39-44页 |
| 4.3.1 C.gloeosporioides产纤维素酶的观察 | 第39-40页 |
| 4.3.2 K.apiculataY23抑制纤维素酶活性的结果 | 第40-43页 |
| 4.3.3 K.apiculataY23抑制纤维素酶活性的机理探究结果 | 第43-44页 |
| 4.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 第五章 K.apiculataY23活性冻干粉的制备 | 第45-52页 |
| 5.1 前言 | 第45页 |
| 5.2 材料与方法 | 第45-47页 |
| 5.2.1 仪器与设备 | 第45页 |
| 5.2.2 培养基 | 第45页 |
| 5.2.3 K.apiculataY23离心参数的选择 | 第45-46页 |
| 5.2.4 单一保护剂的筛选 | 第46页 |
| 5.2.5 复合保护剂的正交优化 | 第46-47页 |
| 5.2.6 K.apiculataY23活性冻干粉贮藏期间存活率的变化 | 第47页 |
| 5.2.7 数据统计与分析 | 第47页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第47-51页 |
| 5.3.1 K.apiculataY23的离心参数 | 第47页 |
| 5.3.2 单一保护剂的筛选 | 第47-49页 |
| 5.3.3 复合保护剂的筛选 | 第49-50页 |
| 5.3.4 K.apiculataY23存活率在储藏期的变化 | 第50-51页 |
| 5.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 第六章 K.apiculataY23活性冻干粉对贮藏期间水蜜桃品质的影响 | 第52-59页 |
| 6.1 前言 | 第52页 |
| 6.2 材料与方法 | 第52-53页 |
| 6.2.1 仪器与设备 | 第52页 |
| 6.2.2 培养基 | 第52页 |
| 6.2.3 供试材料 | 第52页 |
| 6.2.4 K.apiculataY23活性冻干粉对水蜜桃的不同处理 | 第52页 |
| 6.2.5 测定K.apiculataY23在水蜜桃表皮的生长动态 | 第52-53页 |
| 6.2.6 贮藏期间水蜜桃腐烂指数的测定 | 第53页 |
| 6.2.7 贮藏期间水蜜桃失重率的测定 | 第53页 |
| 6.2.8 贮藏期间水蜜桃果实硬度的测定 | 第53页 |
| 6.2.9 贮藏期间水蜜桃可溶性固形物含量的测定 | 第53页 |
| 6.2.10 贮藏期间水蜜桃果皮细胞膜透性的测定 | 第53页 |
| 6.2.11 贮藏期间水蜜桃抗坏血酸含量的测定 | 第53页 |
| 6.2.12 贮藏期间水蜜桃总酸含量的测定 | 第53页 |
| 6.2.13 数据统计与分析 | 第53页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第53-58页 |
| 6.3.1 K.apiculataY23在水蜜桃表皮的生长动态 | 第53-54页 |
| 6.3.2 贮藏期间水蜜桃腐烂指数的变化 | 第54-55页 |
| 6.3.3 贮藏期间水蜜桃失重率的变化 | 第55页 |
| 6.3.4 贮藏期间水蜜桃果实硬度的变化 | 第55-56页 |
| 6.3.5 贮藏期间水蜜桃可溶性固形物含量的变化 | 第56页 |
| 6.3.6 贮藏期间水蜜桃果皮细胞膜透性的变化 | 第56-57页 |
| 6.3.7 贮藏期间水蜜桃维生素C含量的变化 | 第57页 |
| 6.3.8 贮藏期间水蜜桃总酸含量的变化 | 第57-58页 |
| 6.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 第七章 结论与展望 | 第59-61页 |
| 7.1 结论 | 第59-60页 |
| 7.2 展望 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读硕士期间发表的论文和参加的科研 | 第67页 |
