| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 符号说明 | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-28页 |
| 1.1 引言 | 第17-18页 |
| 1.2 生物活性肽 | 第18-20页 |
| 1.3 抗氧化肽的研究进展 | 第20-26页 |
| 1.3.1 氧化损伤与抗氧化 | 第20-21页 |
| 1.3.2 抗氧化活性检测方法 | 第21-23页 |
| 1.3.3 抗氧化肽的抗氧化作用机制 | 第23页 |
| 1.3.4 陆地生物蛋白源抗氧化肽 | 第23-25页 |
| 1.3.5 海洋生物蛋白源抗氧化肽 | 第25页 |
| 1.3.6 抗氧化肽的分离纯化及应用前景 | 第25-26页 |
| 1.4 本论文研究目的和内容 | 第26-28页 |
| 1.4.1 研究背景和意义 | 第26-27页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第27-28页 |
| 第二章 蓝圆鲹蛋白制备抗氧化肽的酶解工艺研究 | 第28-50页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.1 材料 | 第28-29页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-32页 |
| 2.3.1 蓝圆鲹蛋白原料分析 | 第29页 |
| 2.3.2 分子量分布分析 | 第29页 |
| 2.3.3 蓝圆鲹蛋白酶解用酶筛选 | 第29-31页 |
| 2.3.4 抗氧化活性测定 | 第31页 |
| 2.3.5 蓝圆鲹蛋白酶解工艺优化 | 第31-32页 |
| 2.3.6 蓝圆鲹蛋白酶解制备不同水解度酶解产物 | 第32页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第32-37页 |
| 2.4.1 蓝圆鲹蛋白的基本成分测定 | 第32-33页 |
| 2.4.2 蓝圆鲹蛋白酶解用酶的筛选 | 第33-37页 |
| 2.5 蓝圆鲹蛋白酶解工艺条件优化 | 第37-45页 |
| 2.5.1 单因素法优化蓝圆鲹蛋白酶解工艺 | 第37-41页 |
| 2.5.2 响应面法优化酶解工艺 | 第41-45页 |
| 2.6 水解程度对产物抗氧化活性的影响 | 第45-48页 |
| 2.6.1 水解程度对酶解产物抗氧化能力的影响 | 第46页 |
| 2.6.2 水解程度对酶解产物氨基酸组成的影响 | 第46-47页 |
| 2.6.3 水解程度对酶解产物分子量分布的影响 | 第47-48页 |
| 2.7 本章小结 | 第48-50页 |
| 第三章 碱性蛋白酶酶解蓝圆鲹蛋白的宏观动力学研究 | 第50-60页 |
| 3.1 引言 | 第50页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第50-51页 |
| 3.2.1 材料 | 第50-51页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第51页 |
| 3.3 实验方法 | 第51-53页 |
| 3.3.1 碱性蛋白酶活性测定 | 第51页 |
| 3.3.2 碱性蛋白酶失活常数及其热稳定性测定 | 第51-52页 |
| 3.3.3 米氏常数K_m和最大反应速度V_(max)的测定 | 第52页 |
| 3.3.4 碱性蛋白酶酶解蓝圆鲹蛋白的宏观动力学研究 | 第52-53页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第53-59页 |
| 3.4.1 碱性蛋白酶酶活测定及失活热动力学考察 | 第53-55页 |
| 3.4.2 米氏常数求取 | 第55-56页 |
| 3.4.3 动力学模型及参数求取 | 第56-58页 |
| 3.4.4 可控酶解动力学模型验证 | 第58-59页 |
| 3.5 本章小结 | 第59-60页 |
| 第四章 蓝圆鲹蛋白抗氧化肽的分离纯化及结构鉴定 | 第60-72页 |
| 4.1 引言 | 第60页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第60-61页 |
| 4.2.1 材料 | 第60页 |
| 4.2.2 主要仪器设备 | 第60-61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-62页 |
| 4.3.1 抗氧化能力测定 | 第61页 |
| 4.3.2 分子量分布分析 | 第61页 |
| 4.3.3 超滤分离蓝圆鲹抗氧化肽 | 第61页 |
| 4.3.4 Sephadex G-15凝胶层析分离蓝圆鲹抗氧化肽 | 第61-62页 |
| 4.3.5 RP-HPLC分离蓝圆鲹抗氧化肽 | 第62页 |
| 4.3.6 MALDI-TOF/TOF MS质谱分析 | 第62页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第62-71页 |
| 4.4.1 超滤分离 | 第62-63页 |
| 4.4.2 凝胶层析 | 第63-68页 |
| 4.4.3 RP-HPLC分离 | 第68-69页 |
| 4.4.4 氨基酸序列分析 | 第69-71页 |
| 4.5 本章小结 | 第71-72页 |
| 第五章 抗氧化反应动力学研究 | 第72-85页 |
| 5.1 引言 | 第72页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第72-73页 |
| 5.2.1 材料 | 第72-73页 |
| 5.2.2 主要仪器设备 | 第73页 |
| 5.3 实验方法 | 第73-74页 |
| 5.3.1 抗氧化能力测定 | 第73页 |
| 5.3.2 抗氧化肽与DPPH·的反应动力学研究 | 第73-74页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第74-84页 |
| 5.4.1 抗氧化能力测定 | 第75-77页 |
| 5.4.2 肽序列与抗氧化活性关系探讨 | 第77-78页 |
| 5.4.3 抗氧化肽清除DPPH·的反应动力学研究 | 第78-84页 |
| 5.5 本章小结 | 第84-85页 |
| 第六章 蓝圆鲹蛋白抗氧化肽的稳定性研究及其协同效应初探 | 第85-96页 |
| 6.1 引言 | 第85页 |
| 6.2 材料与仪器 | 第85-86页 |
| 6.2.1 材料 | 第85页 |
| 6.2.2 主要仪器设备 | 第85-86页 |
| 6.3 实验方法 | 第86-90页 |
| 6.3.1 蓝圆鲹抗氧化肽RSH-Ⅲ的制备 | 第86页 |
| 6.3.2 RSH-Ⅲ的抗氧化能力测定 | 第86页 |
| 6.3.3 RSH-Ⅲ的稳定性研究 | 第86-87页 |
| 6.3.4 蓝圆鲹抗氧化肽与肽类抗氧化剂的协同效应研究 | 第87-88页 |
| 6.3.5 蓝圆鲹抗氧化肽与非肽类抗氧化剂的协同效应研究 | 第88-90页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第90-95页 |
| 6.4.1 温度对蓝圆鲹抗氧化肽活性的影响 | 第90页 |
| 6.4.2 pH值对蓝圆鲹抗氧化肽活性的影响 | 第90-91页 |
| 6.4.3 体外模拟胃肠消化酶系对蓝圆鲹多肽抗氧化活性的影响 | 第91-92页 |
| 6.4.4 蓝圆鲹抗氧化肽与其他抗氧化剂的协同抗氧化效应初探 | 第92-95页 |
| 6.5 本章小结 | 第95-96页 |
| 第七章 结论与展望 | 第96-100页 |
| 7.1 结论 | 第96-98页 |
| 7.2 本论文的创新之处 | 第98页 |
| 7.3 展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-112页 |
| 致谢 | 第112-113页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第113页 |
