摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1. 引言 | 第10-18页 |
1.1 山杏 | 第10页 |
1.2 山杏仁 | 第10-12页 |
1.3 生物活性肽 | 第12-13页 |
1.3.1 生物活性肽简介 | 第12页 |
1.3.2 生物活性肽的制备和结构鉴定 | 第12-13页 |
1.4 脂多糖诱导巨噬细胞产生NO与炎症反应关系 | 第13-15页 |
1.4.1 NO简介 | 第13-14页 |
1.4.2 炎症反应 | 第14页 |
1.4.3 脂多糖诱导巨噬细胞产生NO与炎症反应关系 | 第14-15页 |
1.5 抗炎药物和食源抗炎活性物质 | 第15-17页 |
1.5.1 抗炎药物存在的问题 | 第15页 |
1.5.2 食源性抗炎活性肽的研究进展 | 第15-16页 |
1.5.3 抗炎肽的作用机理研究进展 | 第16-17页 |
1.6 研究内容和意义 | 第17页 |
1.7 技术路线 | 第17-18页 |
2. 山杏仁蛋白酶水解物抑制LPS诱导巨噬细胞产生NO | 第18-30页 |
2.1 材料与方法 | 第18-22页 |
2.1.1 实验材料 | 第18-19页 |
2.1.2 仪器设备 | 第19页 |
2.1.3 实验方法 | 第19-22页 |
2.2 结果 | 第22-28页 |
2.2.1 山杏蛋白水解物对LPS诱导巨噬细胞产NO的影响 | 第22-24页 |
2.2.2 抑制脂多糖诱导巨噬细胞产生NO的山杏仁蛋白酶水解物制备条件优化 | 第24-28页 |
2.3 讨论 | 第28-29页 |
2.4 本章小结 | 第29-30页 |
3. 抑制LPS诱导巨噬细胞产生NO的山杏仁源活性肽鉴定 | 第30-38页 |
3.1 材料与方法 | 第30-32页 |
3.1.1 实验材料 | 第30页 |
3.1.2 仪器设备 | 第30-31页 |
3.1.3 实验方法 | 第31-32页 |
(1) 格里斯实验 | 第31页 |
(2) Nano-LC-ESI-MS/MS | 第31-32页 |
(3) 计算机模拟分子对接技术 | 第32页 |
(4) 数据统计分析 | 第32页 |
3.2 结果 | 第32-37页 |
3.2.1 不同分子量山杏仁蛋白酶水解物抑制NO活性比较 | 第32-33页 |
3.2.2 Nano-LC-ESI-MS/MS鉴定结果 | 第33-35页 |
3.2.3. 山杏源活性肽与iNOS酶活性中心的结合 | 第35页 |
3.2.4. 山杏源活性肽DMTEEF和FEAYEF抑制NO活性的验证 | 第35-37页 |
3.3 讨论 | 第37页 |
3.4 本章小结 | 第37-38页 |
4. 山杏仁源活性肽减缓LPS诱导的氧化毒性的初步研究 | 第38-51页 |
4.1 材料与方法 | 第38-43页 |
4.1.1 实验材料 | 第38页 |
4.1.2 仪器设备 | 第38-39页 |
4.1.3. 实验方法 | 第39-43页 |
(1) OH·水平的测定 | 第39-40页 |
(2) MDA水平的测定 | 第40-41页 |
(3) SOD水平的测定 | 第41-42页 |
(4) GSH-Px水平的测定 | 第42-43页 |
(5) 数据统计分析 | 第43页 |
4.2 结果 | 第43-49页 |
4.2.1 山杏仁源活性肽对OH产量的影响 | 第43-44页 |
4.2.2 山杏仁源活性肽对MDA产量的影响 | 第44页 |
4.2.3 山杏仁源活性肽对SOD产量的影响 | 第44页 |
4.2.4 山杏仁源活性肽对GSH-Px产量的影响 | 第44-49页 |
4.3 讨论 | 第49-50页 |
4.4 本章小结 | 第50-51页 |
5. 结论和展望 | 第51-54页 |
5.1 结论 | 第51页 |
5.2 展望 | 第51-52页 |
5.3. 创新点 | 第52-54页 |
参考文献 | 第54-62页 |
个人简介 | 第62-64页 |
导师简介 | 第64-66页 |
致谢 | 第66页 |