| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1.1 采后处理与贮藏环境 | 第11-13页 |
| 1.1.1 气调贮藏的研究 | 第11-13页 |
| 1.1.2 1-MCP处理对贮藏的影响 | 第13页 |
| 1.2 果实贮藏品质的研究 | 第13-19页 |
| 1.2.1 贮藏期间果实品质的变化 | 第14页 |
| 1.2.2 细胞壁物质的变化 | 第14-16页 |
| 1.2.3 细胞壁降解酶类活性 | 第16-19页 |
| 1.3 本研究的目的及意义 | 第19-21页 |
| 第2章 ‘富士’苹果贮藏期间品质指标的研究 | 第21-29页 |
| 2.1 材料与处理 | 第21页 |
| 2.2 主要仪器与试剂 | 第21-22页 |
| 2.3 测定项目与方法 | 第22-23页 |
| 2.3.1 苹果果实硬度的测定 | 第22页 |
| 2.3.2 苹果果实可溶性固形物含量测定 | 第22页 |
| 2.3.3 苹果果实pH值的测定 | 第22页 |
| 2.3.4 苹果果实果胶含量测定 | 第22-23页 |
| 2.4 数据统计 | 第23页 |
| 2.5 结果与分析 | 第23-29页 |
| 2.5.1 1-MCP处理时期对‘富士’苹果硬度的影响 | 第23-24页 |
| 2.5.2 1-MCP处理时期对‘富士’苹果可溶性固形物的影响 | 第24-25页 |
| 2.5.3 1-MCP处理时期对‘富士’苹果pH值的影响 | 第25-26页 |
| 2.5.4 1-MCP处理时期对‘富士’苹果果胶含量的影响 | 第26-29页 |
| 第3章 ‘富士’苹果贮藏期间果实软化相关酶活性的研究 | 第29-41页 |
| 3.1 材料与处理 | 第29页 |
| 3.2 主要仪器与试剂 | 第29-30页 |
| 3.3 测定项目与方法 | 第30-34页 |
| 3.3.1 多聚半乳糖醛酸酶活性测定 | 第30-31页 |
| 3.3.2 果胶甲酯酶活性测定 | 第31-32页 |
| 3.3.3 果胶酸裂解酶活性测定 | 第32页 |
| 3.3.4 纤维素酶活性测定 | 第32-33页 |
| 3.3.5 β-半乳糖苷酶活性测定 | 第33页 |
| 3.3.6 α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶活性测定 | 第33-34页 |
| 3.4 数据统计 | 第34页 |
| 3.5 结果与分析 | 第34-41页 |
| 3.5.1 1-MCP处理时期对‘富士’苹果多聚半乳糖醛酸酶(PG)活性的影响 | 第34-35页 |
| 3.5.2 1-MCP处理时期对‘富士’苹果果胶甲酯酶(PME)活性的影响 | 第35-36页 |
| 3.5.3 1-MCP处理时期对‘富士’苹果果胶酸裂解酶(PL)活性的影响 | 第36-37页 |
| 3.5.4 1-MCP处理时期对‘富士’苹果纤维素酶(EG)活性的影响 | 第37页 |
| 3.5.5 1-MCP处理时期对‘富士’苹果β-半乳糖苷酶(β-Gal)活性的影响 | 第37-38页 |
| 3.5.6 1-MCP处理时期对‘富士’苹果α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶(α-L-Af)活性的影响 | 第38-41页 |
| 第4章 ‘富士’苹果贮藏期间果实软化相关基因表达量的研究 | 第41-57页 |
| 4.1 材料与处理 | 第41页 |
| 4.2 主要仪器与试剂 | 第41-42页 |
| 4.3 测定项目与方法 | 第42-46页 |
| 4.3.1 苹果果实RNA的提取 | 第42-43页 |
| 4.3.2 反转录cDNA | 第43-44页 |
| 4.3.3 ‘富士’软化相关基因引物设计 | 第44-45页 |
| 4.3.4 相关基因退火温度确定、引物二聚体检测及RT-PCR | 第45-46页 |
| 4.4 数据统计 | 第46页 |
| 4.5 结果与分析 | 第46-57页 |
| 4.5.1 RNA检测 | 第46页 |
| 4.5.2 引物二聚体检测 | 第46页 |
| 4.5.3 退火温度筛选 | 第46-50页 |
| 4.5.4 RT-PCR结果 | 第50-57页 |
| 第5章 讨论 | 第57-61页 |
| 第6章 结论与展望 | 第61-63页 |
| 6.1 结论 | 第61-62页 |
| 6.2 展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第75页 |
