| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第9-17页 |
| 1.1 概述植物多糖的研究 | 第9-13页 |
| 1.1.1 植物多糖的提取、分离及纯化 | 第9-11页 |
| 1.1.2 植物多糖的结构性质 | 第11页 |
| 1.1.3 植物多糖的药用价值 | 第11-13页 |
| 1.2 苦荞茶的研究概况 | 第13-14页 |
| 1.3 本课题研究内容及目的意义 | 第14-17页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第14-15页 |
| 1.3.2 目的意义 | 第15-17页 |
| 第2章 苦荞茶多糖超声波提取工艺优化 | 第17-29页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 材料与仪器设备 | 第17-18页 |
| 2.2.1. 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.2.2. 实验试剂 | 第18页 |
| 2.2.3. 实验仪器与设备 | 第18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.3.1 苦荞茶多糖提取 | 第18-19页 |
| 2.3.2 单因素实验 | 第19-20页 |
| 2.3.3 应用中心组合方案优化苦荞茶多糖提取工艺 | 第20页 |
| 2.3.4 实验结果处理 | 第20页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第20-26页 |
| 2.4.1 各单因素的实验结果与分析 | 第20-23页 |
| 2.4.2 基于中心组合设计优化超声波辅助苦荞茶多糖提取工艺 | 第23-26页 |
| 2.5 本章小结 | 第26-29页 |
| 第3章 苦荞茶多糖分离纯化及组成分析 | 第29-39页 |
| 3.1 引言 | 第29页 |
| 3.2 材料与仪器设备 | 第29-30页 |
| 3.2.1. 实验材料 | 第29页 |
| 3.2.2. 实验试剂 | 第29-30页 |
| 3.2.3. 实验仪器与设备 | 第30页 |
| 3.3 实验方法 | 第30-33页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第33-37页 |
| 3.4.1 DEAE-52纤维素分离苦荞茶多糖结果 | 第33页 |
| 3.4.2 G-100葡聚糖凝胶纯化苦荞茶多糖结果 | 第33-35页 |
| 3.4.3 TBTP、TBTP-1、TBTP-2、TBTP-3样品的单糖组成分析 | 第35-37页 |
| 3.5 本章小结 | 第37-39页 |
| 第4章 苦荞茶多糖对高糖高脂诱导损伤的HUVECs细胞的保护作用 | 第39-49页 |
| 4.1 引言 | 第39页 |
| 4.2 材料与仪器设备 | 第39-41页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第39页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第39-40页 |
| 4.2.3 实验仪器设备 | 第40-41页 |
| 4.3 实验方法 | 第41-44页 |
| 4.3.1 MTT法检测苦荞茶多糖对HUVECs细胞增殖影响 | 第41-42页 |
| 4.3.2 Annexin V-FITC/PI双染法检测HUVECs细胞凋亡 | 第42页 |
| 4.3.3 Western Blot细胞内凋亡蛋白表达检测 | 第42-43页 |
| 4.3.4 细胞内ROS含量测定 | 第43页 |
| 4.3.5 统计与分析 | 第43-44页 |
| 4.4 结果与分析 | 第44-47页 |
| 4.4.1 MTT法检测苦荞茶多糖对HUVECs细胞增殖影响结果 | 第44页 |
| 4.4.2 Annexin V-FITC/PI双染法检测HUVECs细胞凋亡的结果 | 第44-46页 |
| 4.4.3 凋亡相关蛋白的表达情况 | 第46-47页 |
| 4.4.4 细胞内ROS含量检测结果 | 第47页 |
| 4.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 第5章 结论 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第63页 |
