摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
第1章 引言 | 第12-21页 |
1.1 水产品中的生物胺 | 第12-14页 |
1.2 生物胺的检测方法 | 第14-17页 |
1.2.1 色谱法 | 第14-15页 |
1.2.2 毛细管电泳法 | 第15-16页 |
1.2.3 生物传感器法 | 第16页 |
1.2.4 酶联免疫吸附法 | 第16-17页 |
1.3 生物胺的产生与抑制 | 第17-19页 |
1.3.1 生物胺的形成机制 | 第17-18页 |
1.3.2 生物胺的抑制与去除 | 第18-19页 |
1.4 论文的立题依据、研究目的和主要研究内容 | 第19-21页 |
1.4.1 立题依据及研究目的 | 第19页 |
1.4.2 研究内容 | 第19-21页 |
第2章 鱼肉中生物胺的两种衍生测定方法比较研究 | 第21-30页 |
2.1 引言 | 第21页 |
2.2 实验材料 | 第21-22页 |
2.2.1 仪器 | 第21-22页 |
2.2.2 试剂 | 第22页 |
2.3 实验方法 | 第22-24页 |
2.3.1 标准储备液的配制 | 第22页 |
2.3.2 样品的处理和其中生物胺的检测 | 第22-23页 |
2.3.3 样品及标准品的衍生 | 第23页 |
2.3.4 色谱条件 | 第23-24页 |
2.3.5 标准工作曲线 | 第24页 |
2.3.6 两种方法检出限、加标回收率以及测量精密度 | 第24页 |
2.4 结果与讨论 | 第24-29页 |
2.4.1 两种方法对生物胺的分离结果 | 第24-25页 |
2.4.2 几种鱼肉中的生物胺含量 | 第25-26页 |
2.4.3 线性范围和检出限 | 第26-27页 |
2.4.4 加标回收率 | 第27-28页 |
2.4.5 测量精密度 | 第28-29页 |
2.5 本章小结 | 第29-30页 |
第3章 不同温度贮藏过程中生物胺等鲜度指标的变化特征 | 第30-40页 |
3.1 引言 | 第30页 |
3.2 实验材料 | 第30-31页 |
3.2.1 仪器 | 第30页 |
3.2.2 试剂 | 第30-31页 |
3.3 贮藏实验方法 | 第31页 |
3.4 生物胺等指标的检测方法 | 第31-33页 |
3.4.1 生物胺的检测 | 第31页 |
3.4.2 TVB-N的检测 | 第31-32页 |
3.4.3 微生物的测量 | 第32-33页 |
3.5 数据分析 | 第33页 |
3.6 结果与讨论 | 第33-38页 |
3.6.1 不同温度贮藏过程中生物胺含量的变化 | 第33-35页 |
3.6.2 挥发性盐基氮值的变化 | 第35-36页 |
3.6.3 微生物数量的变化 | 第36-37页 |
3.6.4 贮藏过程中生物胺含量、TVB-N值与微生物生长的相关性 | 第37-38页 |
3.7 本章小结 | 第38-40页 |
第4章 组胺抑制剂的研制及其在蓝圆鲹贮藏过程中抑制组胺产生的应用 | 第40-47页 |
4.1 引言 | 第40页 |
4.2 实验材料 | 第40-41页 |
4.2.1 仪器 | 第40页 |
4.2.2 试剂 | 第40-41页 |
4.3 实验方法 | 第41-42页 |
4.3.1 鱼肉样品处理方法 | 第41页 |
4.3.2 单一抑制剂的试验 | 第41页 |
4.3.3 正交实验方法 | 第41-42页 |
4.4 结果与讨论 | 第42-46页 |
4.4.1 单一抑制剂对组胺的抑制效果 | 第42-43页 |
4.4.2 正交实验的结果 | 第43-45页 |
4.4.3 验证试验 | 第45-46页 |
4.5 本章小结 | 第46-47页 |
第5章 结论与展望 | 第47-49页 |
5.1 主要结论 | 第47-48页 |
5.1.1 鱼肉中生物胺的两种衍生测定方法比较研究 | 第47页 |
5.1.2 不同温度贮藏过程中生物胺等鲜度指标的变化特征 | 第47-48页 |
5.1.3 组胺抑制剂的研制及其在蓝圆鲹贮藏过程中抑制组胺产生的应用 | 第48页 |
5.2 创新点 | 第48页 |
5.3 展望 | 第48-49页 |
致谢 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-58页 |
在学期间发表的学术论文 | 第58页 |