| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 新疆葡萄及其保鲜现状 | 第13页 |
| 1.2 SO_2在果蔬保鲜中的应用 | 第13-14页 |
| 1.3 CLO_2在果蔬保鲜中的应用 | 第14-15页 |
| 1.4 双组份 SO_2-CLO_2保鲜剂 | 第15页 |
| 1.5 葡萄采后贮藏品质的研究 | 第15-16页 |
| 1.6 葡萄采后活性氧代谢的研究 | 第16-17页 |
| 1.7 葡萄白藜芦醇 | 第17-18页 |
| 1.8 白藜芦醇的提取研究现状 | 第18页 |
| 1.9 白藜芦醇的纯化研究现状 | 第18-19页 |
| 1.10 白藜芦醇的检测研究现状 | 第19-20页 |
| 1.11 本文主要研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 SO_2-ClO_2对葡萄采后相关品质参数的影响 | 第21-31页 |
| 2.1 引言 | 第21-22页 |
| 2.2 试剂与仪器 | 第22页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第22页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第22页 |
| 2.3 方法 | 第22-24页 |
| 2.3.1 供试材料 | 第22-23页 |
| 2.3.2 果实处理 | 第23页 |
| 2.3.3 SO_2残留量的测定 | 第23页 |
| 2.3.4 果实 Vc 的测定 | 第23页 |
| 2.3.5 可溶性糖的测定 | 第23-24页 |
| 2.3.6 可滴定酸的测定 | 第24页 |
| 2.3.7 硬度和失重率的测定 | 第24页 |
| 2.3.8 外观品质的测定 | 第24页 |
| 2.3.9 数据分析 | 第24页 |
| 2.4 结果与分析 | 第24-29页 |
| 2.4.1 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 SO_2残留的影响 | 第24-25页 |
| 2.4.2 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 Vc 含量的影响 | 第25-26页 |
| 2.4.3 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄可溶性糖含量的影响 | 第26-27页 |
| 2.4.4 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄可滴定酸含量的影响 | 第27页 |
| 2.4.5 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄硬度的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.6 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄失重率的影响 | 第28页 |
| 2.4.7 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄外观品质的的影响 | 第28-29页 |
| 2.5 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 SO_2-ClO_2对葡萄活性氧代谢及抗氧化相关酶的影响 | 第31-43页 |
| 3.1 前言 | 第31页 |
| 3.2 实验材料 | 第31-33页 |
| 3.2.1 材料与处理 | 第31-32页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第32页 |
| 3.2.3 主要试剂 | 第32-33页 |
| 3.3 方法 | 第33-34页 |
| 3.3.1 超氧化物岐化酶(SOD)活性的测定 | 第33页 |
| 3.3.2 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第33页 |
| 3.3.3 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第33页 |
| 3.3.4 抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性的测定 | 第33页 |
| 3.3.5 丙二醛(MDA)的测定 | 第33页 |
| 3.3.6 H2O_2的测定 | 第33页 |
| 3.3.7 超氧化物自由基(O_2-·)的测定 | 第33页 |
| 3.3.8 数据分析 | 第33-34页 |
| 3.4 结果与分析 | 第34-41页 |
| 3.4.1 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 MDA 的影响 | 第34页 |
| 3.4.2 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 H2O_2的影响 | 第34-35页 |
| 3.4.3 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 O_2-·的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.4 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 SOD 活性的影响 | 第36页 |
| 3.4.5 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 POD 活性的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.6 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 CAT 活性的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.7 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 APX 活性的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.8 葡萄抗氧化酶和活性氧的相关分析 | 第39-40页 |
| 3.4.9 葡萄抗氧化酶和活性氧的回归分析 | 第40-41页 |
| 3.5 讨论 | 第41-43页 |
| 第四章 固相萃取-高效液相色谱法测定葡萄皮中的白藜芦醇 | 第43-53页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 材料与方法 | 第43-45页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第43-44页 |
| 4.2.2 色谱条件 | 第44页 |
| 4.2.3 白藜芦醇标准溶液的配制 | 第44页 |
| 4.2.4 样品的制备 | 第44-45页 |
| 4.2.5 准确度和精密度测定 | 第45页 |
| 4.2.6 数据分析 | 第45页 |
| 4.3 结果与分析 | 第45-52页 |
| 4.3.1 萃取条件的选择 | 第45-46页 |
| 4.3.1.1 固相萃取条件 | 第45-46页 |
| 4.3.1.2 洗脱液用量的选择 | 第46页 |
| 4.3.2 检测波长的确定 | 第46-47页 |
| 4.3.3 流动相比例的选择 | 第47-48页 |
| 4.3.4 方法学考察 | 第48-50页 |
| 4.3.4.1 标准曲线的绘制及检测限的确定 | 第48-49页 |
| 4.3.4.2 加标回收率实验 | 第49页 |
| 4.3.4.3 精密度实验 | 第49-50页 |
| 4.3.4.4 重复性实验 | 第50页 |
| 4.3.5 白藜芦醇的稳定性实验 | 第50-51页 |
| 4.3.6 葡萄皮中白藜芦醇含量的测定 | 第51-52页 |
| 4.4 结果与分析 | 第52-53页 |
| 第五章 葡萄皮中的白藜芦醇提取方法的研究 | 第53-63页 |
| 5.1 引言 | 第53页 |
| 5.2 材料与方法 | 第53-56页 |
| 5.2.1 仪器与试剂 | 第53-54页 |
| 5.2.2 白藜芦醇色谱条件 | 第54页 |
| 5.2.3 样品的制备 | 第54-55页 |
| 5.2.4 单因素实验 | 第55页 |
| 5.2.5 正交实验 | 第55页 |
| 5.2.6 验证实验 | 第55-56页 |
| 5.2.7 数据分析 | 第56页 |
| 5.3 结果与分析 | 第56-62页 |
| 5.3.1 提取条件的选择与优化 | 第56-60页 |
| 5.3.1.1 提取溶剂的选择 | 第56-57页 |
| 5.3.1.2 固液比的选择 | 第57-58页 |
| 5.3.1.3 提取次数的选择 | 第58页 |
| 5.3.1.4 提取温度的选择 | 第58-59页 |
| 5.3.1.5 超声时间的选择 | 第59-60页 |
| 5.3.2 正交优化实验结果分析 | 第60-61页 |
| 5.3.3 验证实验结果分析 | 第61-62页 |
| 5.4 讨论 | 第62-63页 |
| 第六章 SO_2-ClO_2对葡萄白藜芦醇及相关合成酶的影响 | 第63-69页 |
| 6.1 前言 | 第63页 |
| 6.2 材料与试剂 | 第63页 |
| 6.3 仪器与试剂 | 第63页 |
| 6.4 方法 | 第63-64页 |
| 6.4.1 样品制备 | 第63-64页 |
| 6.4.2 色谱条件 | 第64页 |
| 6.4.3 苯丙氨酸解氨酶(PAL)的测定 | 第64页 |
| 6.4.4 抗氧化酶的测定 | 第64页 |
| 6.4.5 数据分析 | 第64页 |
| 6.5 结果与分析 | 第64-67页 |
| 6.5.1 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄皮中白藜芦醇的影响 | 第64-65页 |
| 6.5.2 SO_2-ClO_2和 SO_2处理对葡萄 PAL 活性的影响 | 第65-66页 |
| 6.5.3 葡萄 PAL 抗病酶与抗氧化酶的相关分析 | 第66-67页 |
| 6.6 讨论 | 第67-69页 |
| 第七章 结论与展望 | 第69-71页 |
| 7.1 结论 | 第69-70页 |
| 7.2 本文创新点 | 第70页 |
| 7.3 展望 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 附录 | 第76-77页 |
| 硕士在读期间发表论文 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
