素食者降解大豆异黄酮产生雌马酚菌的分离与鉴定
| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 1 绪论 | 第12-21页 |
| ·雌马酚与大豆异黄酮的概述 | 第12-15页 |
| ·雌马酚 | 第12页 |
| ·大豆异黄酮 | 第12-14页 |
| ·大豆异黄酮代谢降解产雌马酚途径 | 第14-15页 |
| ·国内外研究现状 | 第15-19页 |
| ·雌马酚测定方法 | 第15-16页 |
| ·产雌马酚菌的研究现状 | 第16-17页 |
| ·菌株分离鉴定国内外研究 | 第17-18页 |
| ·肠道菌群研究 | 第18-19页 |
| ·课题研究目的及意义 | 第19页 |
| ·研究内容 | 第19-20页 |
| ·创新之处 | 第20-21页 |
| 2 人体尿样雌马酚含量测定 | 第21-33页 |
| ·引言 | 第21页 |
| ·实验材料与仪器 | 第21-22页 |
| ·实验材料试剂 | 第21页 |
| ·实验仪器 | 第21-22页 |
| ·实验方法与研究内容 | 第22-24页 |
| ·雌马酚最大吸收波长与标准曲线的测定 | 第22页 |
| ·供试者尿样采集及雌马酚含量测定 | 第22-23页 |
| ·尿样脱色条件的考察 | 第23页 |
| ·尿样纯化工艺研究 | 第23-24页 |
| ·尿样中雌马酚含量测定 | 第24页 |
| ·实验结果与分析 | 第24-32页 |
| ·雌马酚标液全波长紫外扫描结果 | 第24-25页 |
| ·雌马酚标准曲线绘制 | 第25页 |
| ·人体尿样雌马酚测定 | 第25-27页 |
| ·尿样脱色研究结果 | 第27-28页 |
| ·尿样纯化工艺 | 第28-32页 |
| ·本章小结 | 第32-33页 |
| 3 产雌马酚肠道菌培养条件筛选 | 第33-39页 |
| ·引言 | 第33页 |
| ·实验材料与仪器 | 第33-34页 |
| ·实验材料试剂 | 第33页 |
| ·实验仪器 | 第33-34页 |
| ·实验方法和内容 | 第34-36页 |
| ·粪样采集及处理 | 第34页 |
| ·大豆异黄酮底物制备 | 第34页 |
| ·最佳稀释倍数确定 | 第34页 |
| ·培养基的选择 | 第34-35页 |
| ·培养方式的选择 | 第35-36页 |
| ·培养基中雌马酚测定 | 第36页 |
| ·实验结果与分析 | 第36-38页 |
| ·最佳稀释倍数的确定 | 第36-37页 |
| ·不同培养方式比较结果 | 第37页 |
| ·不同培养基的筛选结果 | 第37-38页 |
| ·本章小结 | 第38-39页 |
| 4 产雌马酚肠道菌的培养条件优化 | 第39-50页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·实验材料与仪器 | 第39页 |
| ·实验材料试剂 | 第39页 |
| ·实验仪器 | 第39页 |
| ·实验方法与研究内容 | 第39-41页 |
| ·麦康凯培养条件优化 | 第39-40页 |
| ·BHI培养条件优化 | 第40-41页 |
| ·实验结果与分析 | 第41-49页 |
| ·麦康凯培养条件优化结果 | 第41-45页 |
| ·BHI培养条件优化结果 | 第45-49页 |
| ·本章小结 | 第49-50页 |
| 5 产雌马酚肠道菌分离与鉴定 | 第50-59页 |
| ·引言 | 第50页 |
| ·实验材料与仪器 | 第50页 |
| ·实验材料试剂 | 第50页 |
| ·实验仪器 | 第50页 |
| ·实验内容与方法 | 第50-54页 |
| ·产雌马酚肠道菌的分离与纯培养 | 第50-51页 |
| ·产雌马酚菌株的形态学鉴定及生理生化鉴定 | 第51-53页 |
| ·细菌16srDNA序列分析 | 第53-54页 |
| ·实验结果与分析 | 第54-58页 |
| ·产雌马酚肠道菌的分离结果 | 第54-55页 |
| ·革兰氏染色结果 | 第55页 |
| ·电镜扫描结果 | 第55-56页 |
| ·菌株的生理生化反应 | 第56-57页 |
| ·16SrDNA测序结果 | 第57-58页 |
| ·本章小结 | 第58-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 附件 | 第67页 |
